| 摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略词表 | 第11-17页 |
| 引言 | 第17-20页 |
| 1 文献综述 | 第20-51页 |
| 1.1 抗生素核酸适配体 | 第20-22页 |
| 1.1.1 核酸适配体的定义及筛选 | 第20-21页 |
| 1.1.2 核酸适配体的优势 | 第21-22页 |
| 1.1.3 抗生素核酸适配体用于检测的机制 | 第22页 |
| 1.2 用于抗生素等小分子检测的比色法/荧光法适配体传感器 | 第22-32页 |
| 1.2.1 比色/荧光适配体传感器的检测原理 | 第22-23页 |
| 1.2.2 比色法适配体传感器检测抗生素简介 | 第23-29页 |
| 1.2.2.1 无机纳米粒子比色法适配体传感器 | 第23-27页 |
| 1.2.2.2 有机物比色法适配体传感器 | 第27-29页 |
| 1.2.3 荧光适配体传感器检测抗生素简介 | 第29-32页 |
| 1.2.3.1 非标记型荧光核酸适配体传感器 | 第29-31页 |
| 1.2.3.2 标记型荧光核酸适配体传感器 | 第31-32页 |
| 1.3 生物放大体系 | 第32-35页 |
| 1.3.1 酶信号放大策略 | 第33-34页 |
| 1.3.2 DNA信号放大策略 | 第34页 |
| 1.3.3 纳米材料的信号放大策略 | 第34-35页 |
| 1.4 本文研究背景、意义及内容 | 第35-38页 |
| 参考文献 | 第38-51页 |
| 2 基于双链DNA抗体标记酶联聚合物作为纳米示踪剂和信号放大的比色法检测抗生素 | 第51-68页 |
| 2.1 引言 | 第51-53页 |
| 2.2 实验部分 | 第53-55页 |
| 2.2.1 试剂及器材 | 第53-54页 |
| 2.2.2 设备 | 第54页 |
| 2.2.3 纳米金的制备 | 第54页 |
| 2.2.4 Au MNPs的制备 | 第54页 |
| 2.2.5 合成捕获探针 | 第54-55页 |
| 2.2.6 信号探针的制备 | 第55页 |
| 2.2.7 比色法适配体传感器的制备 | 第55页 |
| 2.2.8 实际样品中CAP的检测 | 第55页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第55-64页 |
| 2.3.1 金纳米粒子（Au NPs）、四氧化三铁纳米粒子(Fe_3O_4)，Au MNPs，AuMNPs-dsDNA的表征 | 第55-56页 |
| 2.3.2 ds DNA抗体/ EV-AuNPs-HRP的表征 | 第56-57页 |
| 2.3.3 比色法适配体传感器的检测原理 | 第57-58页 |
| 2.3.4 比色法适配体传感器中不同的信号标签的使用 | 第58-59页 |
| 2.3.5 实验条件的优化 | 第59-60页 |
| 2.3.6 核酸适配体传感器的选择性与特异性 | 第60-61页 |
| 2.3.7 分析比色法适配体传感器的性能 | 第61-63页 |
| 2.3.8 真实样品应用 | 第63-64页 |
| 2.4 本章小结 | 第64页 |
| 参考文献 | 第64-68页 |
| 3 基于HRP固定在Pt纳米粒子上和Exo I辅助目标物循环的三重信号放大比色法及其用于抗生素检测研究 | 第68-86页 |
| 3.1 引言 | 第68-70页 |
| 3.2 试剂和方法 | 第70-71页 |
| 3.2.1 试剂和化学品 | 第70页 |
| 3.2.2 AuMNPs@anti-DNA的合成 | 第70-71页 |
| 3.2.3 ds- Apt-HRP纳米示踪剂和复合探针的制备 | 第71页 |
| 3.2.4 开发检测CAP的比色法 | 第71页 |
| 3.2.5 实际牛奶样品中氯霉素的检测 | 第71页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第71-81页 |
| 3.3.1 AuMNPs和AuMNPs@anti-DNA的表征 | 第71-73页 |
| 3.3.2 表征纳米示踪剂及其组件 | 第73-74页 |
| 3.3.3 三倍信号放大性能和检测 | 第74-76页 |
| 3.3.4 实验条件的优化 | 第76-77页 |
| 3.3.5 选择性和特异性核酸适配体传感器 | 第77-78页 |
| 3.3.6 比色法传感器的分析性能 | 第78-80页 |
| 3.3.7 在分析中的应用 | 第80-81页 |
| 3.4 本章小结 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-86页 |
| 4 基于信号“开”策略的荧光传感器检测抗生素的研究 | 第86-100页 |
| 4.1 引言 | 第86-88页 |
| 4.2 实验 | 第88-89页 |
| 4.2.1 试剂和化学品 | 第88页 |
| 4.2.2 设备 | 第88页 |
| 4.2.3 探针合成 | 第88-89页 |
| 4.2.4 用制备的荧光复合探针检测CAP | 第89页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第89-96页 |
| 4.3.1 构建和表征磁珠，磁珠-双链DNA抗体 | 第89-90页 |
| 4.3.2 表征dsDNA–Pt–luminol–hemin/G-quadruplex | 第90-91页 |
| 4.3.3 检测机制和提高灵敏度性能 | 第91-92页 |
| 4.3.4 实验条件的优化 | 第92-93页 |
| 4.3.5 核酸适配体传感器的选择性和特异性 | 第93-94页 |
| 4.3.6 分析性能的荧光传感器 | 第94-95页 |
| 4.3.7 在分析中的应用 | 第95-96页 |
| 4.4 本章小结 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-100页 |
| 5 基于核酸适配体-脂质体囊泡探针的荧光传感器检测抗生素研究 | 第100-117页 |
| 5.1 引言 | 第100-102页 |
| 5.2 实验 | 第102-104页 |
| 5.2.1 试剂和化学品 | 第102-103页 |
| 5.2.2 设备 | 第103页 |
| 5.2.3 复合荧光囊泡探针的合成 | 第103-104页 |
| 5.2.4 分析过程 | 第104页 |
| 5.2.5 实际样品中CAP的检测 | 第104页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第104-112页 |
| 5.3.1 DIL，脂质体，脂质体包裹DIL，单链DNA结合蛋白/脂质体包裹DIL、氨基化的磁珠，MB-Apt的表征 | 第104-106页 |
| 5.3.2 比较使用SSB-DIL和Lip-DIL作为信号标签的荧光强度 | 第106-107页 |
| 5.3.3 实验条件的优化 | 第107-108页 |
| 5.3.4 核酸适配体荧光传感器的选择性和特异性 | 第108-109页 |
| 5.3.5 验证检测机理和提高荧光性能 | 第109-110页 |
| 5.3.6 分析性能的荧光传感器 | 第110-111页 |
| 5.3.7 分析应用 | 第111-112页 |
| 5.4 本章小结 | 第112-113页 |
| 参考文献 | 第113-117页 |
| 6 基于均相和信号“关-开”策略的荧光核酸适配体传感器利用囊泡量子点胶体金复合探针检测抗生素 | 第117-131页 |
| 6.1 引言 | 第117-119页 |
| 6.2 实验 | 第119-120页 |
| 6.2.1 试剂和化学药品 | 第119页 |
| 6.2.2 设备 | 第119页 |
| 6.2.3 合成纳米示踪剂和复合探头 | 第119-120页 |
| 6.2.4 分析检测过程 | 第120页 |
| 6.2.5 牛奶样品中CAP的检测 | 第120页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第120-127页 |
| 6.3.1 表征QDs、脂质体、L-QDs，SSB/ L-QDs | 第120-122页 |
| 6.3.2 脂质体的信号放大性能 | 第122页 |
| 6.3.3 检测机理的研究 | 第122-123页 |
| 6.3.4 实验条件的优化 | 第123-124页 |
| 6.3.5 分析荧光适配体传感器的性能 | 第124-126页 |
| 6.3.6 核酸适配体传感器的选择性和特异性研究 | 第126-127页 |
| 6.3.7 真实样品检测 | 第127页 |
| 6.4 本章小结 | 第127-128页 |
| 参考文献 | 第128-131页 |
| 7 全文总结与展望 | 第131-134页 |
| 7.1 全文总结 | 第131-132页 |
| 7.2 展望 | 第132-134页 |
| 8 在学研究成果 | 第134-136页 |
| 致谢 | 第136页 |
