| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一部分：文献综述 | 第13-22页 |
| 1.1 炎症的特点 | 第13-14页 |
| 1.2 炎症细胞的聚集 | 第14-15页 |
| 1.3 炎症的清除 | 第15页 |
| 1.4 胚胎造血发育 | 第15-16页 |
| 1.5 髓系应急造血 | 第16-17页 |
| 1.6 模式识别受体 | 第17-18页 |
| 1.7 Toll样受体及其信号通路 | 第18-19页 |
| 1.8 IL1β 的活化 | 第19-20页 |
| 1.9 斑马鱼造血及其优势 | 第20-22页 |
| 第二部分：材料与方法 | 第22-41页 |
| 2.1 实验动物 | 第22页 |
| 2.2 实验仪器 | 第22页 |
| 2.3 实验材料和耗材 | 第22-28页 |
| 2.3.1 实验试剂及配置 | 第23-24页 |
| 2.3.2 全胚原位杂交相关试剂及配制 | 第24-26页 |
| 2.3.3 抗生素及LB培养基（固体及液体）配制 | 第26-27页 |
| 2.3.4 其他常用试剂 | 第27-28页 |
| 2.4 基因组DNA提取 | 第28-29页 |
| 2.5 cDNA第一链合成 | 第29-30页 |
| 2.6 荧光实时定量PCR | 第30-31页 |
| 2.7 目的片段扩增 | 第31-32页 |
| 2.8 PCR产物回收 | 第32-34页 |
| 2.9 质粒转化，扩增与鉴定 | 第34-35页 |
| 2.10 RNA探针的制备 | 第35-36页 |
| 2.11 全胚原位杂交 | 第36-37页 |
| 2.12 苏丹黑染色 | 第37页 |
| 2.13 PH3染色 | 第37-39页 |
| 2.14 斑马鱼胚胎显微注射 | 第39-41页 |
| 第三部分：实验结果 | 第41-53页 |
| 3.1 LPS诱导的斑马鱼髓系应急造血模型 | 第41-42页 |
| 3.2 髓系应急造血在myd88-/-被抑制 | 第42-44页 |
| 3.3 myd88-/-中巨噬细胞的增殖和凋亡 | 第44-45页 |
| 3.4 髓系应急造血中NFκB被激活 | 第45-47页 |
| 3.4.1 LPS刺激后NFκB的应答 | 第45-46页 |
| 3.4.2 NFκB抑制剂对髓系应急造血的影响 | 第46-47页 |
| 3.5 il1b参与髓系应急造血的应答 | 第47-49页 |
| 3.5.1 il1b在LPS刺激后表达上调 | 第47页 |
| 3.5.2 il1b敲降后髓系应急造血受到抑制 | 第47-48页 |
| 3.5.3 il1b过表达可引起髓系应急造血 | 第48-49页 |
| 3.6 C/ebpβ 表达在MyD88-NFκB信号阻断后下调 | 第49-50页 |
| 3.7 C/ebpβ 参与髓系应急造血的应答 | 第50-53页 |
| 3.7.1 髓系应急造血在C/ebpβΔ1/Δ1被抑制 | 第50-51页 |
| 3.7.2 C/ebpβ 过表达后髓系应急造血增强 | 第51-53页 |
| 第四部分：讨论与分析 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 致谢 | 第58-60页 |
| 在读期间发表的文章 | 第60页 |
