| 致谢 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 缩略语 | 第12-15页 |
| 1 引言 | 第15-18页 |
| 2 材料和试剂 | 第18-22页 |
| 2.1 实验材料 | 第18页 |
| 2.2 细胞及细胞培养相关试剂 | 第18页 |
| 2.3 实验动物 | 第18页 |
| 2.4 MTT、CCK8和Hoechst/PI | 第18页 |
| 2.5 Western blot蛋白印记检测相关试剂 | 第18-21页 |
| 2.6 组织学检测相关试剂 | 第21页 |
| 2.7 实验仪器和设备 | 第21页 |
| 2.8 数据分析 | 第21-22页 |
| 3. 实验方法 | 第22-29页 |
| 3.1 细胞培养步骤 | 第22页 |
| 3.2 CCK8实验步骤 | 第22页 |
| 3.3 MTT实验步骤 | 第22-23页 |
| 3.4 Hoechst/PI染色 | 第23页 |
| 3.5 Western blot实验步骤 | 第23-25页 |
| 3.6 实验动物 | 第25-26页 |
| 3.7 标本处理 | 第26页 |
| 3.8 HE染色 | 第26-27页 |
| 3.9 Masson染色 | 第27-28页 |
| 3.10 分析统计 | 第28-29页 |
| 4. 实验结果 | 第29-45页 |
| 4.1 光镜下观察到L-EGCG影响H22和HepG2细胞的生长状态 | 第29页 |
| 4.2 L-EGCG对H22和HepG2细胞的毒性检测 | 第29-31页 |
| 4.3 L-EGCG促进H22和HepG2细胞凋亡 | 第31-33页 |
| 4.4 L-EGCG促进H22和HepG2细胞的PARP蛋白剪切 | 第33页 |
| 4.5 L-EGCG影响H22和HepG2细胞自噬相关蛋白的表达 | 第33-35页 |
| 4.6 L-EGCG抑制ICR小鼠腋下移植瘤 | 第35-38页 |
| 4.7 建立裸鼠肝脏原位移植瘤模型 | 第38-39页 |
| 4.8 L-EGCG给药1个月对裸鼠原位移植瘤的抑制作用 | 第39-41页 |
| 4.9 L-EGCG给药3个月对原位移植瘤裸鼠生存期的影响以及组织学改变 | 第41-45页 |
| 5. 讨论 | 第45-49页 |
| 6. 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-52页 |
| 综述 | 第52-64页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 作者简历及在读期间所取得的科研成果 | 第64页 |
