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树鼩精原干细胞转基因载体的构建

摘要第6-7页
ABSTRACT第7-8页
缩略词第13-14页
第一章 绪论第14-28页
    1.1 引言第14-15页
    1.2 树鼩作为实验动物模型的研究现状第15-20页
        1.2.1 树鼩基础生物学第15-18页
        1.2.2 树鼩作为实验动物研究的一些进展第18-20页
    1.3 实现转基因操作的途径第20-22页
    1.4 哺乳动物精原干细胞研究进展第22-26页
        1.4.1 精原干细胞简介第22-23页
        1.4.2 精原干细胞标记物研究进展第23-24页
        1.4.3 精原干细胞的分离与培养第24-25页
            1.4.3.1 精原干细胞的分离与纯化第24-25页
            1.4.3.2 精原干细胞的培养第25页
        1.4.4 精原干细胞的用途与作用第25-26页
        1.4.5 利用精原干细胞进行基因修饰的概况及挑战第26页
    1.5 利用精原干细胞进行转基因树鼩构建的展望第26-28页
第二章 树鼩精原干细胞的获取第28-38页
    2.1 引言第28页
    2.2 实验材料与方法第28-36页
        2.2.1 实验动物第28页
        2.2.2 实验试剂第28-29页
        2.2.3 实验试剂配制方法第29-30页
        2.2.4 实验器材第30-32页
        2.2.5 实验设计第32-36页
            2.2.5.1 实验一:树鼩睾丸原代细胞的获取第32-34页
            2.2.5.2 实验二:树鼩精原干细胞的获取第34-36页
    2.3 实验结果第36页
    2.4 讨论第36-38页
第三章 慢病毒载体构建第38-52页
    3.1 引言第38页
    3.2 材料与方法第38-50页
        3.2.1 实验用质粒第38页
        3.2.2 实验试剂第38-40页
        3.2.3 实验试剂的配制第40-41页
        3.2.4 实验器材第41-42页
        3.2.5 实验设计第42-50页
            3.2.5.1 实验一:pTomo载体的巨细胞病毒(CMV)启动子替换为EF1a启动子第42-48页
            3.2.5.2 实验二:将SIV慢病毒载体的CAG启动子替换为EF1a启动子第48-49页
            3.2.5.3 实验三:将SIV慢病毒载体的CAG启动子替换为PGK启动子第49-50页
    3.3 实验结果第50-51页
        3.3.1 pTomo慢病毒载体CMV启动子替换为EF1a启动子第50页
        3.3.2 SIV慢病毒载体CAG启动子替换为EF1a启动子第50-51页
        3.3.3 SIV慢病毒载体CAG启动子替换为PGK启动子第51页
    3.4 讨论第51-52页
第四章 不同慢病毒包装效率及感染效果比较第52-68页
    4.1 引言第52页
    4.2 实验材料与方法第52-60页
        4.2.1 慢病毒包装所需包装质粒第52页
        4.2.2 实验试剂第52-53页
        4.2.3 实验试剂配制方法第53-54页
        4.2.4 实验器材第54页
        4.2.5 实验设计第54-60页
            4.2.5.1 慢病毒载体大批量质粒提取第54-56页
            4.2.5.2 pTomo系列慢病毒包装第56-59页
            4.2.5.3 SIV系列慢病毒包装第59页
            4.2.5.4 慢病毒感染测试第59-60页
    4.3 实验结果第60-66页
        4.3.1 pTomo系列慢病毒包装第60-61页
            4.3.1.1 pTomo慢病毒包装第60页
            4.3.1.2 pTomo-EF1a慢病毒包装第60-61页
        4.3.2 SIV系列慢病毒包装第61-63页
            4.3.2.1 SIV慢病毒包装第61-62页
            4.3.2.2 SIV-EF1a慢病毒包装第62页
            4.3.2.3 SIV-PGK慢病毒包装第62-63页
        4.3.3 不同慢病毒对不同细胞的感染第63-66页
            4.3.3.1 SIV慢病毒对小鼠胚胎干细胞的感染第63-64页
            4.3.3.2 pTomo慢病毒对树鼩睾丸体细胞的感染第64-65页
            4.3.3.3 S1V慢病毒对树鼩原代精原:干细胞的感染第65页
            4.3.3.4 SIV-EF1a慢病毒对树鼩原代精原干细胞的感染第65-66页
            4.3.3.5 SIV-PGK慢病毒对树鼩原代精原干细胞的感染第66页
    4.4 讨论第66-68页
第五章 转基因树鼩精原干细胞系的应用验证第68-82页
    5.1 引言第68页
    5.2 实验材料与方法第68-79页
        5.2.1 实验动物第68页
        5.2.2 实验试剂第68-69页
        5.2.3 实验试剂的配制方法第69-71页
        5.2.4 实验器材第71-72页
        5.2.5 实验设计第72-79页
            5.2.5.1 慢病毒转染构建转基因树鼩精原干细胞系第72页
            5.2.5.2 移植树鼩精子检测第72-73页
            5.2.5.3 子代树鼩EGFP的PCR检测第73-75页
            5.2.5.4 子代树鼩EGFP的蛋白检测第75-79页
    5.3 实验结果第79-81页
        5.3.1 移植树鼩精子DNA检测第79-80页
        5.3.2 子代树鼩EGFP的检测第80-81页
            5.3.2.1 子代树鼩组织DNA样品的PCR检测第80-81页
        5.3.3 蛋白检测结果第81页
    5.4 讨论第81-82页
第六章 结论第82-84页
致谢第84-86页
参考文献第86-95页

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