| 个人简历 | 第1-8页 |
| 缩略词 | 第8-10页 |
| 摘要 | 第10-13页 |
| ABSTRACT | 第13-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 第一章 藜芦碱对HepG2细胞的毒性作用及其机制 | 第19-43页 |
| 1 实验材料 | 第19-21页 |
| ·实验细胞 | 第19页 |
| ·实验药物与试剂 | 第19-20页 |
| ·实验器材 | 第20-21页 |
| 2 实验方法 | 第21-29页 |
| ·人肝癌HepG2细胞培养 | 第21页 |
| ·CCK-8检测细胞存活率和细胞形态学的观察 | 第21-22页 |
| ·乳酸脱氢酶活性测定 | 第22-23页 |
| ·线粒体膜电位的检测 | 第23-24页 |
| ·活性氧浓度的检测 | 第24-25页 |
| ·细胞凋亡的检测 | 第25-26页 |
| ·实时荧光定量PCR检测HepG2细胞P53,Bax,细胞色素c,胱天蛋白酶9和胱天蛋白酶3 mRNA表达 | 第26-28页 |
| ·数据分析 | 第28-29页 |
| 3 实验结果 | 第29-40页 |
| ·藜芦碱对HepG2细胞存活率的影响 | 第29-31页 |
| ·乳酸脱氢酶LDH的检测 | 第31页 |
| ·线粒体膜电位的检测 | 第31-33页 |
| ·流式细胞仪ROS的检测 | 第33-35页 |
| ·细胞凋亡的检测 | 第35-37页 |
| ·Realtime-PCR 检测细胞 P53、Bax、CytochromeC、Caspase-9、Caspase-3 mRNA 的表达 | 第37-40页 |
| 4 小结与讨论 | 第40-43页 |
| 第二章 藜芦人参合用对HepG2细胞的毒性作用及其机制 | 第43-72页 |
| 1 实验材料 | 第43-46页 |
| ·实验细胞 | 第43页 |
| ·实验药物与试剂 | 第43-45页 |
| ·实验器材 | 第45-46页 |
| 2 实验方法 | 第46-59页 |
| ·人肝癌HepG2细胞培养 | 第46-47页 |
| ·CCK-8检测细胞存活率 | 第47-48页 |
| ·DAPI染色观察细胞形态学 | 第48-49页 |
| ·实时荧光定量PCR对Caspase 3的检测 | 第49页 |
| ·线粒体膜电位的检测 | 第49-50页 |
| ·细胞凋亡的检测 | 第50-51页 |
| ·实时荧光定量PCR检测CYP450酶 | 第51-52页 |
| ·CYP450酶活性的检测 | 第52页 |
| ·蛋白印迹分析(Western blotting) | 第52-59页 |
| 3 数据分析 | 第59页 |
| 4 实验结果 | 第59-71页 |
| ·藜芦碱人参皂苷联用对HepG2细胞存活率的影响 | 第59-61页 |
| ·DAPI染色观察细胞形态学 | 第61页 |
| ·实时荧光定量PCR检测Caspase 3 | 第61-62页 |
| ·线粒体膜电位的检测 | 第62-64页 |
| ·细胞凋亡的检测 | 第64-66页 |
| ·实时荧光定量PCR检测CYP450酶 | 第66-67页 |
| ·CYP450酶活性的检测 | 第67-69页 |
| ·蛋白印迹分析(Western blotting) | 第69-71页 |
| 5 小结与讨论 | 第71-72页 |
| 第三章 藜芦人参合用对人肝微粒体酶活性的影响 | 第72-81页 |
| 1 实验材料 | 第72-73页 |
| ·实验药物 | 第72-73页 |
| ·实验试剂 | 第73页 |
| ·实验器材 | 第73页 |
| 2 实验方法 | 第73-77页 |
| ·Cocktail探针法实验原理 | 第73-76页 |
| ·肝微粒体孵育反应 | 第76页 |
| ·代谢产物检测条件 | 第76-77页 |
| ·数据分析 | 第77页 |
| 3 实验结果 | 第77-80页 |
| 4 小结与讨论 | 第80-81页 |
| 全文总结 | 第81-83页 |
| 参考文献 | 第83-88页 |
| 综述 | 第88-97页 |
| 参考文献 | 第94-97页 |
| 致谢 | 第97-99页 |
| 在读期间发表论文情况 | 第99-100页 |
| 附件 | 第100-106页 |
