摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
第1章 绪论 | 第10-22页 |
·1,3-丙二醇 | 第10-11页 |
·1,3-丙二醇的应用 | 第10-11页 |
·1,3-丙二醇的生产方法 | 第11页 |
·甘油转化为1,3-丙二醇的代谢途径 | 第11-12页 |
·1,3-丙二醇氧化还原酶 | 第12-13页 |
·酶促反应动力学 | 第13-19页 |
·酶促反应动力学的特点 | 第13页 |
·酶的抑制作用模型 | 第13-16页 |
·双底物反应的动力学模型 | 第16-18页 |
·酶促反应动力学参数测定方法 | 第18-19页 |
·PDOR 酶促动力学反应模型研究现状 | 第19-20页 |
·选题目的及意义 | 第20页 |
·研究内容 | 第20-22页 |
第2章 实验方法和材料 | 第22-29页 |
·实验药品与仪器 | 第22-23页 |
·实验药品 | 第22页 |
·实验仪器 | 第22-23页 |
·实验方法 | 第23-29页 |
·Klebsiella pneumonise 基因组DNA 的提取 | 第23-24页 |
·PCR 产物的回收方法 | 第24页 |
·PCR 产物与pMD18–T–Simple 克隆质粒的连接方法 | 第24页 |
·热冲击法转化大肠杆菌 | 第24-25页 |
·无细胞粗提液 | 第25页 |
·酶活分析方法 | 第25页 |
·蛋白质的测定 | 第25-26页 |
·SDS-PAGE 电泳和PDOR 蛋白含量 | 第26页 |
·气相色谱法分析3–HPA | 第26-27页 |
·醛基总含量测定-色氨酸-盐酸法(Try–HCl) | 第27页 |
·NADH 和NAD+含量的测定 | 第27页 |
·酶促反应初速度测定 | 第27-29页 |
第3章 PROR 的克隆、表达与纯化 | 第29-42页 |
·概述 | 第29页 |
·克隆基因dhaT 并构建表达质粒 | 第29-32页 |
·dhaT 基因的克隆 | 第29-30页 |
·PCR 产物的克隆与测序 | 第30页 |
·dhaT 的表达质粒pDK-dhaT 的构建 | 第30-32页 |
·PDOR 的表达 | 第32-34页 |
·PDOR 基因dhaT 在E.coli DH5α中表达 | 第32-33页 |
·发酵培养E.coli DH5α(pDK-dhaT)菌体 | 第33-34页 |
·1,3-丙二醇氧化还原酶的纯化 | 第34-41页 |
·硫酸铵沉淀法 | 第34-35页 |
·凝胶过滤层析 | 第35-37页 |
·阴离子交换层析 | 第37-40页 |
·硫酸铵沉淀-Sephadex G-200-DE23 Cellulose | 第40-41页 |
·本章小结 | 第41-42页 |
第4章 丙烯醛水合法制3-羟基丙醛 | 第42-52页 |
·概述 | 第42-44页 |
·3-羟基丙醛的物理和化学性质 | 第42页 |
·3-HPA 水溶液体系 | 第42-44页 |
·3-HPA 的制备 | 第44-45页 |
·气相色谱方法的建立 | 第45-47页 |
·柱子与内标物的选择 | 第45-46页 |
·合成3-HPA 溶液各组分初步定性分析实验 | 第46-47页 |
·3-HPA 的合成条件优化 | 第47-48页 |
·萃取提纯3-HPA 实验研究 | 第48-51页 |
·3-HPA 在正丁醇、乙酸乙酯和正己烷中的溶解性 | 第48-49页 |
·3-HPA 在乙酸乙酯和水中的分配 | 第49-50页 |
·反萃实验 | 第50-51页 |
·结论 | 第51-52页 |
第5章 PDOR 动力学模型的建立及计算 | 第52-71页 |
·概述 | 第52页 |
·PDOR 动力学模型建立 | 第52-55页 |
·PDOR 动力学模型求解方法 | 第55-61页 |
·动力学模型求解步骤 | 第55-57页 |
·实验方法 | 第57-58页 |
·实验 | 第58-61页 |
·结果与讨论 | 第61-70页 |
·酶浓度与初速度关系 | 第61-63页 |
·正、逆反应非抑制区域的确定 | 第63-65页 |
·PDOR 动力学模型中参数计算 | 第65-69页 |
·PDOR 动力学模型的验证 | 第69-70页 |
·本章小结 | 第70-71页 |
结论 | 第71-72页 |
参考文献 | 第72-77页 |
攻读硕士学位期间承担的科研任务和主要成果 | 第77-78页 |
致谢 | 第78-79页 |
作者简介 | 第79页 |