| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-16页 |
| ·植物成花机理 | 第8页 |
| ·植物 MADS 基因 | 第8-13页 |
| ·MADS-box 基因起源与功能 | 第8页 |
| ·MADS-box 基因的分类 | 第8-11页 |
| ·MADS 转录因子结构 | 第11页 |
| ·转录因子间的相互作用 | 第11-13页 |
| ·酵母双杂交（H2Y） | 第13-14页 |
| ·H2Y 基本原理 | 第13页 |
| ·GAL4 系统 | 第13页 |
| ·H2Y 的局限性和发展 | 第13-14页 |
| ·山核桃成花机理 | 第14-15页 |
| ·研究目的和意义 | 第15-16页 |
| 第二章 山核桃 MADS 蛋白的酵母双杂交检测 | 第16-40页 |
| ·材料 | 第16-17页 |
| ·植物材料 | 第16页 |
| ·菌株与质粒 | 第16页 |
| ·试剂 | 第16-17页 |
| ·引物合成与 DNA 测序 | 第17页 |
| ·方法 | 第17-23页 |
| ·RNA 提取 | 第17-18页 |
| ·RNA 质量检测 | 第18页 |
| ·cDNA 合成 | 第18页 |
| ·基因克隆 | 第18-19页 |
| ·CcMADSs 序列分析 | 第19页 |
| ·CcTM 的 qRT-PCR 分析 | 第19页 |
| ·酵母表达载体构建 | 第19页 |
| ·酵母转化 | 第19-20页 |
| ·CcMADS-box 自激活检测 | 第20页 |
| ·CcMADS-box H2Y 检测 | 第20-21页 |
| ·杂交酵母菌的 Western Blot | 第21页 |
| ·AtSOC1 的 H2Y 检测 | 第21页 |
| ·CcSOC1 结构域的 H2Y 检测 | 第21-23页 |
| ·结果与分析 | 第23-37页 |
| ·山核桃花芽 RNA 和拟南芥 RNA 提取 | 第23页 |
| ·山核桃 MADS-box 全长 ORF 克隆 | 第23-24页 |
| ·山核桃 MADS-box 全长 ORF 序列分析 | 第24-32页 |
| ·CcTM 在不同组织中的表达分析 | 第32页 |
| ·酵母双杂交载体构建 | 第32-33页 |
| ·CcMADS-box 自激活检测和 H2Y 检测 | 第33-35页 |
| ·杂交酵母的 WB 检测 | 第35-36页 |
| ·CcSOC1 结构域的 H2Y 检测和 AtSOC1 的 H2Y 检测 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-40页 |
| 第三章 花芽中 CcMADS 蛋白表达水平的 WB 检测 | 第40-51页 |
| ·材料 | 第40-41页 |
| ·植物材料 | 第40页 |
| ·菌株和质粒 | 第40页 |
| ·试剂 | 第40-41页 |
| ·引物设计与合成 | 第41页 |
| ·方法 | 第41-44页 |
| ·CcMADSs 原核表达 | 第41-42页 |
| ·Western Blot | 第42页 |
| ·抗体检测 | 第42页 |
| ·山核桃雌雄花芽不同时期 CcSVP 蛋白表达水平的检测 | 第42-43页 |
| ·自然状态下的 CcSVP 的 WB 检测 | 第43-44页 |
| ·结果与分析 | 第44-49页 |
| ·CcMADS 的原核表达 | 第44-45页 |
| ·抗体检测 | 第45-46页 |
| ·山核桃雌雄花芽不同时期 CcSVP 蛋白含量的相对定量 | 第46-48页 |
| ·自然状态下的 CcSVP 的 WB 检测 | 第48-49页 |
| ·讨论 | 第49-51页 |
| 第四章 结论和展望 | 第51-53页 |
| ·结论 | 第51页 |
| ·展望 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-61页 |
| 附录 | 第61-63页 |
| 个人简介及在校论文发表情况 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
