| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略词表 | 第10-17页 |
| 引言 | 第17-19页 |
| 1 绪论 | 第19-46页 |
| ·金黄色葡萄球菌荚膜 | 第19-23页 |
| ·金黄色葡萄球菌简介 | 第19页 |
| ·5型和8型荚膜 | 第19-21页 |
| ·5型和8型荚膜的毒力 | 第21-23页 |
| ·5型和8型荚膜多糖在动物模型中的保护作用 | 第23页 |
| ·金黄色葡萄球菌毒素及其作为疫苗在动物模型中的保护作用 | 第23-26页 |
| ·α-毒素 | 第24-25页 |
| ·PVL-杀白细胞素 | 第25-26页 |
| ·本研究涉及的金黄色葡萄球菌感染及其免疫防治策略研究进展 | 第26-43页 |
| ·金黄色葡萄球菌奶牛乳房炎 | 第26-34页 |
| ·金黄色葡萄球菌奶牛乳房炎简介 | 第26-28页 |
| ·金黄色葡萄球菌性乳房炎疫苗研究进展 | 第28-30页 |
| ·卵黄抗体(IgY)简介 | 第30-32页 |
| ·卵黄抗体在家畜疾病防治中的应用 | 第32-34页 |
| ·人类主要的金黄色葡萄球菌感染 | 第34-43页 |
| ·金黄色葡萄球菌菌血症和心内膜炎概述 | 第34-35页 |
| ·金黄色葡萄球菌肺炎概述 | 第35页 |
| ·人用金黄色葡萄球菌疫苗研究进展 | 第35-43页 |
| ·论文选题依据及研究内容 | 第43-46页 |
| ·选题依据 | 第43页 |
| ·研究内容 | 第43-46页 |
| 2 金黄色葡萄球菌荚膜及外毒素特异性IGY治疗奶牛乳房炎效果研究 | 第46-68页 |
| ·金黄色葡萄球菌荚膜特异性IgY的制备及体外活性研究 | 第46-58页 |
| ·引言 | 第46页 |
| ·实验材料 | 第46-48页 |
| ·实验方法 | 第48-50页 |
| ·三种荚膜血清型全菌抗原的获得 | 第48页 |
| ·蛋鸡免疫 | 第48-49页 |
| ·检测卵黄中特异性IgY水平 | 第49页 |
| ·检测三种IgY的荚膜特异性(ELISA) | 第49页 |
| ·大规模分离纯化IgY | 第49页 |
| ·纯化IgY的SDS-PAGE | 第49-50页 |
| ·荚膜特异性IgY的体外抑菌实验 | 第50页 |
| ·细菌侵袭乳腺上皮细胞(MAC-T细胞)实验 | 第50页 |
| ·实验结果 | 第50-55页 |
| ·金黄色葡萄球菌全菌疫苗免疫后IgY水平变化 | 第50-51页 |
| ·纯化IgY的SDS-PAGE | 第51-52页 |
| ·荚膜特异性IgY的体外抑菌效果 | 第52-53页 |
| ·三种IgY对金黄色葡萄球菌荚膜的特异性(交叉反应) | 第53-54页 |
| ·三种荚膜特异性IgY阻断金黄色葡萄球菌入侵MAC-T细胞 | 第54-55页 |
| ·讨论 | 第55-57页 |
| ·小结 | 第57-58页 |
| ·金黄色葡萄球菌外毒素及荚膜特异性卵黄抗体联合治疗临床型乳房炎效果 | 第58-68页 |
| ·引言 | 第58页 |
| ·实验材料 | 第58-60页 |
| ·实验方法 | 第60-62页 |
| ·金黄色葡萄球菌外毒素的分离 | 第60页 |
| ·蛋鸡免疫 | 第60页 |
| ·检测卵黄中抗毒素IgY水平变化 | 第60页 |
| ·抗外毒素IgY的分离纯化及其SDS-PAGE | 第60页 |
| ·牛外周血嗜中性粒细胞(PMNs)的分离 | 第60-61页 |
| ·乳酸脱氢酶(LDH)实验检测IgY对奶牛细胞的保护作用 | 第61页 |
| ·细菌侵袭乳腺上皮细胞(MAC-T)实验 | 第61-62页 |
| ·临床型乳房炎实验 | 第62页 |
| ·实验结果 | 第62-66页 |
| ·卵黄中抗外毒素IgY水平的变化 | 第62-63页 |
| ·抗外毒素IgY的SDS-PAGE | 第63页 |
| ·抗外毒素IgY有效中和外毒素对牛PMNs和MAC-T细胞的裂解 | 第63-64页 |
| ·抗外毒素及荚膜IgY联合使用有效阻断金葡菌入侵MAC-T细胞 | 第64-65页 |
| ·抗外毒素及荚膜IgY联合使用对临床型乳房炎的治疗效果 | 第65-66页 |
| ·讨论 | 第66-67页 |
| ·小结 | 第67-68页 |
| 3 金黄色葡萄球菌荚膜多糖-外毒素生物结合疫苗预防人类感染疾病效果研究 | 第68-124页 |
| ·荚膜多糖-外毒素生物结合疫苗体外功能性研究 | 第68-82页 |
| ·引言 | 第68-69页 |
| ·实验材料 | 第69-70页 |
| ·人永生化PMNs(HL60细胞系)调理吞噬杀伤实验所用材料 | 第69页 |
| ·人原代PMNs调理吞噬杀伤实验所用材料 | 第69-70页 |
| ·毒素中和实验所用材料 | 第70页 |
| ·实验方法 | 第70-74页 |
| ·人HL60细胞系调理吞噬杀伤实验 | 第70-72页 |
| ·人原代PMNs调理吞噬杀伤实验 | 第72-73页 |
| ·毒素中和实验方法 | 第73-74页 |
| ·实验结果 | 第74-80页 |
| ·抗体αCP5-Epa,αCP5-Hla,αCP8-Epa调理金葡菌被HL60噬杀 | 第74-75页 |
| ·抗体αCP5-Epa有效调理金黄色葡萄球菌被原代PMNs噬杀 | 第75-77页 |
| ·抗体αCP5-Epa对荚膜的特异性 | 第77-78页 |
| ·特异性抗血清(鼠抗)有效调理杀伤金黄色葡萄球菌 | 第78-79页 |
| ·抗体α CP5-Hla有效中和金黄色葡萄球菌α-毒素的细胞毒作用 | 第79-80页 |
| ·讨论 | 第80-81页 |
| ·小结 | 第81-82页 |
| ·荚膜多糖生物结合疫苗对系统性感染-菌血症的预防效果 | 第82-101页 |
| ·引言 | 第82页 |
| ·实验材料 | 第82-83页 |
| ·实验方法 | 第83-87页 |
| ·本实验中佐剂(铝剂)的选择依据 | 第83-84页 |
| ·主动免疫方法 | 第84-85页 |
| ·应用ELISA检测荚膜多糖特异性抗体 | 第85-86页 |
| ·被动免疫方法 | 第86-87页 |
| ·小鼠菌血症模型的建立 | 第87页 |
| ·实验结果 | 第87-99页 |
| ·主动免疫CP5-Epa的最佳剂量为0.2μg CP5-2 μg Epa | 第87-88页 |
| ·主动免疫CP5-Epa对菌血症的预防效果 | 第88-90页 |
| ·被动免疫αCP5-Epa对菌血症的预防效果 | 第90-92页 |
| ·主动免疫CP5-Hla对菌血症的预防效果 | 第92-96页 |
| ·被动免疫α CP5-Hla对菌血症的预防效果 | 第96-97页 |
| ·主动及被动免疫CP8-Epa对菌血症的预防效果 | 第97-99页 |
| ·讨论 | 第99-100页 |
| ·小结 | 第100-101页 |
| ·多糖-外毒素生物结合疫苗对局部感染-肺炎的预防效果 | 第101-114页 |
| ·引言 | 第101页 |
| ·实验材料 | 第101-102页 |
| ·实验方法 | 第102-104页 |
| ·小鼠肺炎模型的建立 | 第102-103页 |
| ·T细胞剔除实验 | 第103-104页 |
| ·实验结果 | 第104-112页 |
| ·主动免疫CP5-Hla对致死性肺炎的预防效果 | 第104-106页 |
| ·单剂被动免疫αCP5-Hla对肺炎的预防效果 | 第106-107页 |
| ·主动免疫CP5-Hla预防肺炎过程中T细胞的作用 | 第107-111页 |
| ·双剂被动免疫αCP5-Hla对肺炎的保护效果 | 第111页 |
| ·金黄色葡萄球菌荚膜在肺炎中的毒力研究 | 第111-112页 |
| ·讨论 | 第112-113页 |
| ·小结 | 第113-114页 |
| ·抗CP5-Hla特异性抗体对导管所致感染-心内膜炎的预防效果 | 第114-124页 |
| ·引言 | 第114页 |
| ·实验材料 | 第114-115页 |
| ·实验方法 | 第115-117页 |
| ·实验结果 | 第117-122页 |
| ·攻毒前24h静脉注射1mg的α CP5-Hla的保护效果 | 第117-119页 |
| ·攻毒前24h腹腔注射15mg的αCP5-Hla的保护效果 | 第119-122页 |
| ·讨论 | 第122-123页 |
| ·小结 | 第123-124页 |
| 4 结论与展望 | 第124-126页 |
| ·结论 | 第124页 |
| ·创新点摘要 | 第124-125页 |
| ·展望 | 第125-126页 |
| 参考文献 | 第126-139页 |
| 附录A 本研究使用的仪器 | 第139-141页 |
| 附录B 图S1-S4 | 第141-144页 |
| 附录C 本研究中所用的统计学方法 | 第144-145页 |
| 攻读博士学位期间科研项目及科研成果 | 第145-148页 |
| 致谢 | 第148-149页 |
| 作者简介 | 第149-150页 |
