摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-12页 |
第1章 绪论 | 第12-20页 |
·课题背景及研究的目的和意义 | 第12-13页 |
·熊果酸简介 | 第13-14页 |
·熊果酸的理化性质 | 第13页 |
·熊果酸的生物学效应 | 第13-14页 |
·熊果酸的制剂形式及应用前景 | 第14页 |
·脂质体简介 | 第14-16页 |
·脂质体的分类 | 第15页 |
·脂质体的制备方法 | 第15页 |
·脂质体在生物医学领域的应用 | 第15-16页 |
·聚乙二醇简介 | 第16-17页 |
·聚乙二醇的理化性质 | 第16-17页 |
·聚乙二醇的优良性能 | 第17页 |
·聚乙二醇在生物医学领域的应用 | 第17页 |
·壳聚糖简介 | 第17-20页 |
·壳聚糖理化性质 | 第18页 |
·壳聚糖的优良性能 | 第18页 |
·壳聚糖在生物医学领域的应用 | 第18-20页 |
第2章 PEG 化的 UA 纳米脂质体的制备与表征 | 第20-30页 |
·材料 | 第20-21页 |
·主要试验仪器 | 第20页 |
·主要试剂 | 第20-21页 |
·试验方法 | 第21-23页 |
·脂质体的制备 | 第21页 |
·正交试验设计 | 第21页 |
·包封率的测定 | 第21-23页 |
·纳米脂质体的表征 | 第23页 |
·结果与讨论 | 第23-28页 |
·脂质体包封率及正交试验的结果分析 | 第23-25页 |
·纳米脂质体表征的结果分析 | 第25-28页 |
·本章小结 | 第28-30页 |
第3章 PEG 化的 UA 纳米脂质体的体外研究 | 第30-38页 |
·材料 | 第30-31页 |
·主要试验仪器 | 第30页 |
·主要试剂 | 第30页 |
·细胞株 | 第30-31页 |
·试验方法 | 第31-32页 |
·稳定性试验 | 第31页 |
·体外药物释放试验 | 第31页 |
·MTT 试验 | 第31-32页 |
·结果与讨论 | 第32-37页 |
·稳定性试验结果分析 | 第32-33页 |
·体外药物释放试验的结果分析 | 第33-35页 |
·MTT 试验的结果分析 | 第35-37页 |
·本章小结 | 第37-38页 |
第4章 壳聚糖修饰的 UA 纳米脂质体的研究 | 第38-47页 |
·材料 | 第38页 |
·主要试验仪器 | 第38页 |
·主要试剂 | 第38页 |
·试验方法 | 第38-40页 |
·壳聚糖修饰的脂质体的制备 | 第38-39页 |
·壳聚糖修饰的脂质体的表征 | 第39页 |
·壳聚糖修饰的脂质体体外药物释放试验 | 第39页 |
·MTT 试验 | 第39-40页 |
·结果与讨论 | 第40-45页 |
·壳聚糖修饰的脂质体表征的结果分析 | 第40-42页 |
·体外药物释放试验的结果分析 | 第42-43页 |
·MTT 试验的结果分析 | 第43-45页 |
·本章小结 | 第45-47页 |
第5章 UA 纳米脂质体的体内研究 | 第47-70页 |
·材料 | 第47-48页 |
·主要试验仪器 | 第47页 |
·主要试剂及材料 | 第47页 |
·试验动物和细胞株 | 第47-48页 |
·试验方法 | 第48-51页 |
·小鼠肿瘤模型的建立 | 第48页 |
·试验动物的分组和治疗方案 | 第48-49页 |
·观测小鼠体重和肿瘤体积变化 | 第49页 |
·比较小鼠脏器系数的变化 | 第49页 |
·肿瘤抑制率的测定 | 第49页 |
·流式细胞仪检测肿瘤组织的细胞周期变化及凋亡率 | 第49页 |
·药物的血药浓度的测定 | 第49-50页 |
·组织分布研究 | 第50-51页 |
·组织学检查 | 第51页 |
·数据分析 | 第51页 |
·结果与讨论 | 第51-68页 |
·小鼠体重和肿瘤体积变化的结果分析 | 第51-55页 |
·各组小鼠脏器系数的测定结果 | 第55-56页 |
·抑瘤率的测定结果 | 第56-58页 |
·流式细胞仪检测肿瘤组织的细胞周期变化及凋亡率 | 第58-59页 |
·血浆中的药物浓度-时间曲线 | 第59-61页 |
·组织和肿瘤中的药物分布 | 第61-65页 |
·脂质体对小鼠肝脏、肾脏和肿瘤组织的影响 | 第65-68页 |
·本章小结 | 第68-70页 |
结论 | 第70-72页 |
参考文献 | 第72-77页 |
攻读硕士学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第77-78页 |
致谢 | 第78-79页 |
作者简介 | 第79页 |