| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-14页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-28页 |
| 1 黄颡鱼的研究进展 | 第16-17页 |
| 2 硬骨鱼类性类固醇激素 | 第17-20页 |
| 3 鱼类促性腺激素及受体的研究进展 | 第20-22页 |
| 4 P4 50c17-I（17α-羟化酶/17,20 裂解酶）研究进展 | 第22-24页 |
| 5 细胞色素 P45 0 芳香化酶（P45 0arom/CYP19）研究进展 | 第24-26页 |
| 6 鱼类性别决定基因 Sox9 研究进展 | 第26-27页 |
| 7 本研究的目的和意义 | 第27-28页 |
| 第二章 促性腺激素受体基因克隆与在雌鱼生殖周期中的表达 | 第28-53页 |
| 1 材料和方法 | 第29-36页 |
| 2 结果 | 第36-46页 |
| ·黄颡鱼卵巢分期、GSI 和 HSI 卵巢繁殖周期变化 | 第36页 |
| ·黄颡鱼 FSHR cDNA 序列克隆和分析 | 第36-37页 |
| ·黄颡鱼 LHR cDNA 序列克隆和分析 | 第37页 |
| ·FSHR 和 LHR 的系统进化树分析 | 第37-44页 |
| ·FSHR 和 LHR 在不同组织中的表达分析 | 第44-45页 |
| ·FSHR 在卵巢发育周期中卵巢和脑的表达水平 | 第45页 |
| ·LHR 在卵巢发育周期中卵巢和脑的表达水平 | 第45-46页 |
| ·在卵巢发育周期中血浆雌二醇含量的变化 | 第46页 |
| 3 讨论 | 第46-50页 |
| 4 小结 | 第50-53页 |
| 第三章 黄颡鱼 P450c17-I（17α-羟化酶/17，20 裂解酶）cDNA 克隆，雌鱼时空表达和热应激表达分析 | 第53-71页 |
| 1 材料和方法 | 第54-59页 |
| 2 结果 | 第59-66页 |
| ·黄颡鱼 CYP17I cDNA 全长克隆和序列分析 | 第59-62页 |
| ·黄颡鱼 CYP17-I 组织特异性表达分析 | 第62-63页 |
| ·黄颡鱼 CYP17-I 在卵巢发育周期表达和血浆 T 含量变化的分析 | 第63-64页 |
| ·热应激调控下黄颡鱼 CYP17-I 在卵巢和脑中的表达以及血浆 T 含量变化的分析 | 第64-66页 |
| 3 讨论 | 第66-70页 |
| 4 小结 | 第70-71页 |
| 第四章 细胞色素 P450 芳香化酶在雌性黄颡鱼在卵巢发育周期和热 应激条件下的表达模式 | 第71-84页 |
| 1 材料和方法 | 第72-73页 |
| 2 结果 | 第73-80页 |
| ·CYP19A 和 CYP19B 在组织中的特异性表达 | 第73-74页 |
| ·卵巢发育周期中血浆类固醇激素含量的变化 | 第74页 |
| ·卵巢发育周期中 CYP19A 和 CYP19B 在卵巢和脑中表达量的变化 | 第74-75页 |
| ·在热应激条件下 CYP19A 和 CYP19B 在卵巢和脑中表达量和血浆中睾酮和雌二醇含量的变化 | 第75-80页 |
| 3 讨论 | 第80-82页 |
| 4 小结 | 第82-84页 |
| 第五章 Sox9 在黄颡鱼卵巢发育周期的表达及对热应激的响应 | 第84-93页 |
| 1 材料和方法 | 第85-86页 |
| 2 结果 | 第86-90页 |
| ·Sox9a1 和 Sox9a2 在不同组织中的表达分析 | 第86-87页 |
| ·雌性黄颡鱼卵巢发育周期中 Sox9 表达水平，血清中雌二醇含量的变化 | 第87-88页 |
| ·Sox9 在雌性黄颡鱼各卵巢发育阶段热应激调控和血清雌二醇含量变化 | 第88-90页 |
| 3 讨论 | 第90-92页 |
| 4 小结 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-109页 |
| 中英文缩略词表 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 个人简历 | 第111页 |
| 发表的学术论文 | 第111页 |
