| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第1章 CuSO_4L_(51)体外抗肿瘤活性 | 第14-29页 |
| 1 仪器与材料 | 第14-16页 |
| ·细胞株 | 第14页 |
| ·主要仪器 | 第14-15页 |
| ·主要试剂 | 第15-16页 |
| ·主要溶液的配制 | 第16页 |
| 2 实验方法 | 第16-19页 |
| ·细胞培养基本技术 | 第16-17页 |
| ·MTT法检测CuSO_4L_(51)的体外抗肿瘤活性 | 第17页 |
| ·CuSO_4L_(51)对人胃癌SGC-7901细胞形态的影响 | 第17-18页 |
| ·CuSO_4L_(51)对人胃癌SGC-7901细胞周期的影响 | 第18页 |
| ·CuSO_4L_(51)对人胃癌SGC-7901细胞凋亡的影响 | 第18-19页 |
| ·统计学分析 | 第19页 |
| 3 实验结果 | 第19-27页 |
| ·CuSO_4L_(51)体外抗肿瘤活性测定 | 第19-23页 |
| ·CuSO_4L_(51)对SGC-7901细胞形态的影响 | 第23-24页 |
| ·CuSO_4L_(51)对SGC-7901细胞周期的影响 | 第24-25页 |
| ·CuSO_4L_(51)对SGC-7901细胞凋亡的影响 | 第25-27页 |
| 4 讨论 | 第27-28页 |
| 5 结论 | 第28-29页 |
| 第2章 Western-blot法检测CuSO_4L_(51)对多种周期,凋亡相关蛋白表达的影响 | 第29-41页 |
| 1 仪器与材料 | 第29-33页 |
| ·主要仪器 | 第30页 |
| ·主要试剂 | 第30-32页 |
| ·主要溶液的配制 | 第32-33页 |
| 2 实验方法 | 第33-36页 |
| ·实验分组 | 第33页 |
| ·蛋白标准曲线的制备 | 第33页 |
| ·蛋白提取与定量 | 第33-34页 |
| ·Western blotting | 第34-36页 |
| ·统计学分析 | 第36页 |
| 3 实验结果 | 第36-38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| 5 结论 | 第40-41页 |
| 第3章 CuSO_4L_(51)对Caspase-3,Caspase-9基因表达的影响 | 第41-48页 |
| 1 仪器与材料 | 第41-43页 |
| ·主要仪器 | 第41-42页 |
| ·主要试剂 | 第42页 |
| ·主要溶液的配制 | 第42-43页 |
| 2 实验方法 | 第43-44页 |
| ·实验分组 | 第43页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第43页 |
| ·总RNA纯度鉴定 | 第43页 |
| ·RT-PCR逆转录 | 第43-44页 |
| ·荧光定量PCR扩增 | 第44页 |
| ·统计学分析 | 第44页 |
| 3 实验结果 | 第44-46页 |
| ·扩增产物纯度鉴定 | 第44-45页 |
| ·CuSO_4L_(51)对人胃癌SGC-7910细胞Caspase-3,Caspase-9基因转录水平表达的影响 | 第45-46页 |
| 4 讨论 | 第46-47页 |
| 5 结论 | 第47-48页 |
| 全文总结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 综述 肿瘤细胞周期阻滞与凋亡的分子机理研究 | 第55-66页 |
| 1 细胞周期调控 | 第55-57页 |
| ·细胞周期内源性调控 | 第55-56页 |
| ·细胞周期调控检测点 | 第56-57页 |
| 2 细胞凋亡的分子机制 | 第57-60页 |
| ·膜受体通路 | 第58页 |
| ·线粒体途径 | 第58-59页 |
| ·凋亡效应分子 | 第59页 |
| ·细胞凋亡的调控 | 第59-60页 |
| 3 细胞凋亡与肿瘤基因治疗前景 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 攻读硕士期间公开发表的学术论文 | 第67页 |
