中文摘要 | 第1-10页 |
英文摘要 | 第10-12页 |
1 前言 | 第12-29页 |
·叶片衰老 | 第12-18页 |
·植物叶片衰老过程的生理变化 | 第12-13页 |
·植物叶片衰老机理 | 第13-17页 |
·与叶片衰老相关的基因 | 第17-18页 |
·叶片衰老相关基因的表达调控 | 第18页 |
·叶绿素的降解 | 第18-25页 |
·叶绿素分子的结构 | 第18页 |
·叶绿素的降解途径 | 第18-21页 |
·降解代谢途径的修正 | 第21-23页 |
·降解途径的分子调控 | 第23-25页 |
·叶绿素降解的意义 | 第25页 |
·PaO 的结构特点、生理功能及研究进展 | 第25-28页 |
·PaO 的结构特点与生理功能 | 第25-26页 |
·PaO 的研究进展 | 第26-28页 |
·本研究的目的及意义 | 第28-29页 |
2 材料与方法 | 第29-42页 |
·实验材料 | 第29-30页 |
·植物材料 | 第29页 |
·菌株与质粒 | 第29页 |
·酶与各种生化试剂 | 第29页 |
·PCR 引物 | 第29-30页 |
·实验方法 | 第30-42页 |
·实验材料的培养与处理 | 第30-31页 |
·实验材料的培养 | 第30页 |
·实验材料的处理 | 第30-31页 |
·植物总 RNA 的提取与检测 | 第31-32页 |
·利用 RNeasy Plant Mini Kit 提取总 RNA | 第31页 |
·利用 Trizol 试剂盒提取 RNA | 第31页 |
·RNA 中基因组 DNA 的去除 | 第31-32页 |
·甲醛变性凝胶进行 RNA 电泳 | 第32页 |
·cDNA 第一链的合成 | 第32-33页 |
·cDNA 纯化(用于 5 RACE) | 第33页 |
·cDNA 的末端加尾反应(用于 5 RACE) | 第33-34页 |
·目的片段的回收 | 第34页 |
·目的片段与克隆载体的连接 | 第34-35页 |
·大肠杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第35页 |
·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第35页 |
·大肠杆菌感受态细胞的转化 | 第35页 |
·大肠杆菌质粒 DNA 的提取 | 第35-37页 |
·大量法提取质粒 DNA | 第35-36页 |
·试剂盒质粒微量提取方案 | 第36-37页 |
·对重组质粒的酶切鉴定 | 第37页 |
·DNA 序列测定 | 第37-38页 |
·cDNA 全长序列的获得 | 第38-40页 |
·中间片段的扩增 | 第38页 |
·3′ RACE 获得 3′端序列 | 第38-39页 |
·5′ RACE 获得 5′端序列 | 第39-40页 |
·cDNA 全长序列的获得 | 第40页 |
·实时荧光定量 PCR 分析 | 第40-42页 |
3 结果与分析 | 第42-54页 |
·小麦 TaPaO 基因的分离 | 第42-45页 |
·小麦叶片 RNA 的提取及反转录 | 第42页 |
·TaPaO 中间片段的分离 | 第42-43页 |
·TaPaO3′片段的分离 | 第43页 |
·TaPaO5′片段的分离 | 第43-44页 |
·TaPaO 全长 cDNA 的分离 | 第44-45页 |
·TaPaO 的序列分析 | 第45-49页 |
·TaPaO 的全长 cDNA 序列分析 | 第45-46页 |
·TaPaO 编码的蛋白质序列分析 | 第46-49页 |
·TaPaO 的聚类分析 | 第49页 |
·TaPaO 的表达特性分析 | 第49-54页 |
·总 RNA 样品的质量检测 | 第49-50页 |
·TaPaO 在不同组织部位中的表达特性 | 第50页 |
·不同激素诱导下 TaPaO 的表达分析 | 第50-51页 |
·不同非生物胁迫下 TaPaO 的表达分析 | 第51-52页 |
·不同生物胁迫下 TaPaO 的表达分析 | 第52-54页 |
4 讨论 | 第54-57页 |
·基因的克隆 | 第54-55页 |
·组织表达特点 | 第55页 |
·TaPaO 基因受 ABA 和 MeJA 依赖的防御信号途径的调控 | 第55页 |
·TaPaO 基因参与小麦对不同胁迫条件的防御过程 | 第55-56页 |
·植物 PaO 基因研究的展望 | 第56-57页 |
5 结论 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第66页 |