摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
第1章 绪论 | 第10-40页 |
·研究内容、目的及意义 | 第10-11页 |
·ATR概况及其环境风险评估 | 第11-16页 |
·ATR的理化性质和代谢 | 第11-12页 |
·ATR的生物效应和对不同生物的毒性作用 | 第12-14页 |
·ATR的农业应用和致环境污染作用 | 第14-15页 |
·ATR的生物降解 | 第15-16页 |
·斑马鱼是极有价值的模式生物 | 第16-28页 |
·经典模型动物 | 第16-21页 |
·生态环境检测生物 | 第21-24页 |
·神经生物学研究的新星 | 第24-28页 |
·AChE的作用及其活性调节方式 | 第28-34页 |
·AChE的分子特征 | 第28-30页 |
·AChE的经典活性和乙酰胆碱能突触传递 | 第30页 |
·AChE的非经典活性 | 第30-32页 |
·AChE表达调节方式 | 第32-34页 |
·神经系统中细胞凋亡的作用 | 第34-40页 |
·细胞凋亡的类型 | 第34页 |
·经典的凋亡通路 | 第34-36页 |
·神经系统发生的凋亡 | 第36页 |
·斑马鱼胚胎发育中的凋亡 | 第36-40页 |
第2章 材料方法 | 第40-54页 |
·斑马鱼饲养和药物处理 | 第40-43页 |
·斑马鱼亲鱼饲养与日常维护 | 第40页 |
·收集同步受精的斑马鱼胚胎 | 第40-41页 |
·斑马鱼胚胎和幼鱼的培养 | 第41页 |
·ATR处理斑马鱼胚胎和幼鱼 | 第41-42页 |
·培养液和药物处理溶液的配制 | 第42-43页 |
·幼鱼游泳行为测试 | 第43-45页 |
·测试系统 | 第43页 |
·游泳活力检测操作 | 第43-44页 |
·行为学检测指标 | 第44-45页 |
·冰冻切片和组织化学 | 第45-46页 |
·取材与固定 | 第45页 |
·冰冻包埋 | 第45页 |
·低温冷冻切片 | 第45-46页 |
·Nissl染色 | 第46页 |
·溶液试剂配制 | 第46页 |
·AChE活性测定 | 第46-48页 |
·样品处理 | 第46-47页 |
·考马斯亮兰比色法测定样品蛋白浓度 | 第47页 |
·AChE活性定量 | 第47-48页 |
·溶液试剂配制 | 第48页 |
·活体组织学观察 | 第48-51页 |
·肌纤维排列和肌节发育 | 第48-49页 |
·吖啶橙全胚胎染色显示凋亡细胞 | 第49-50页 |
·观察活体胚胎的RB神经元 | 第50页 |
·溶液试剂配制 | 第50-51页 |
·图片处理、数据统计与分析 | 第51页 |
·主要试剂、仪器来源 | 第51-54页 |
·实验试剂 | 第51-52页 |
·主要仪器设备 | 第52-54页 |
第3章 实验结果分析 | 第54-81页 |
·ATR处理梯度 | 第54页 |
·幼鱼的游泳行为与ATR暴露浓度的关系 | 第54-58页 |
·ATR抑制幼鱼的游泳活力 | 第54-56页 |
·ATR主要削弱幼鱼的逃避行为、背腹平衡能力 | 第56-58页 |
·高浓度ATR对幼鱼体肌节发育和运动中枢的影响 | 第58-61页 |
·ATR处理改变肌节内肌纤维的分化和排列方式 | 第59-60页 |
·高浓度ATR使运动中枢内投射纤维减少 | 第60-61页 |
·ATR对胚胎和幼鱼发育过程中的AChE的活性的影响 | 第61-62页 |
·ATR抑制胚胎期初级感觉神经元的凋亡 | 第62-64页 |
·结果图表 | 第64-81页 |
第4章 讨论 | 第81-88页 |
·ATR影响斑马鱼游泳行为整合过程 | 第81-83页 |
·ATR干扰神经回路构建 | 第83-84页 |
·AChE不是ATR的直接作用靶点 | 第84-85页 |
·ATR抑制自发的神经活性导致RB神经元活性依赖的神经元凋亡减少 | 第85-86页 |
·ATR作用机理假说 | 第86-88页 |
第5章 结论 | 第88-90页 |
·ATR抑制肌肉分化和神经支配导致运动异常 | 第88页 |
·ATR干扰初级感觉神经元成熟过程来削弱鱼体对外界信号输入的运动响应 | 第88页 |
·ATR弱化上下行神经传导 | 第88页 |
·游泳活力可以灵敏地反映环境ATR浓度 | 第88-90页 |
参考文献 | 第90-107页 |
硕士在读期间发表论文 | 第107-108页 |
致谢 | 第108页 |