| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-15页 |
| 1 绪论 | 第15-34页 |
| ·引言 | 第15-16页 |
| ·木质纤维素资源及其价值 | 第16页 |
| ·木质纤维素资源开发的重要意义 | 第16-18页 |
| ·木质纤维素的结构 | 第16-17页 |
| ·秸秆的结构 | 第17-18页 |
| ·秸秆类木质素资源开发的意义 | 第18页 |
| ·木质纤维素的水解途径 | 第18-29页 |
| ·影响木质纤维素分解的因素 | 第19-21页 |
| ·木质纤维素生物分解的机理 | 第21-23页 |
| ·分解木质纤维素的微生物 | 第23-24页 |
| ·纤维素酶的结构 | 第24-25页 |
| ·多纤维素酶体 | 第25-26页 |
| ·提高纤维素酶活性的方法 | 第26-27页 |
| ·定向诱变 | 第27页 |
| ·直接进化 | 第27-28页 |
| ·化学物理诱变育种 | 第28页 |
| ·筛选高活性纤维素酶存在的问题和展望 | 第28-29页 |
| ·分子生态学在木质纤维素分解菌群研究中的应用现状 | 第29-32页 |
| ·变性梯度凝胶电泳(DGGE)的原理 | 第29-30页 |
| ·变性梯度凝胶电泳(DGGE)在木质纤维素分解菌群研究中的应用 | 第30-31页 |
| ·用DGGE和克隆文库分析菌群多样性的意义 | 第31-32页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第32-34页 |
| ·NSC-7复合系的功能和存在的问题 | 第32-33页 |
| ·本项研究要解决的问题 | 第33页 |
| ·本研究的意义 | 第33-34页 |
| 2 技术与方法 | 第34-51页 |
| ·培养基及培养条件 | 第34-36页 |
| ·培养基 | 第34-36页 |
| ·培养条件 | 第36页 |
| ·木质纤维素和林丹分解菌复合系的构建 | 第36-37页 |
| ·传统的微生物分离、计数方法 | 第37-39页 |
| ·单菌性质的测定 | 第37-38页 |
| ·有纤维素分解能力细菌的分离 | 第38页 |
| ·稻秆分解实验设置 | 第38-39页 |
| ·高温处理的实验设置 | 第39页 |
| ·种间协同关系的实验设置 | 第39页 |
| ·总DNA的提取---氯苯法 | 第39-40页 |
| ·培养液中微生物总DNA的提取 | 第39-40页 |
| ·发酵秸秆中微生物总DNA的提取 | 第40页 |
| ·PCR-DGGE及DGGE条带测序 | 第40-47页 |
| ·基于PCR的16S rDNA基因可变区域Ⅲ(V3)的扩增 | 第40-43页 |
| ·电泳、染色 | 第43页 |
| ·DGGE条带测序 | 第43-44页 |
| ·16S rDNA测序 | 第44-45页 |
| ·系统树的建立 | 第45页 |
| ·核苷酸序列的基因库登录号 | 第45页 |
| ·环境微生物群体多样性分析法 | 第45-47页 |
| ·稻秆分解过程中指标评定 | 第47-50页 |
| ·pH测定 | 第47页 |
| ·微生物量(OD)测定 | 第47页 |
| ·林丹含量测定 | 第47页 |
| ·滤纸平板法验证菌系降解纤维素情况 | 第47页 |
| ·挥发性发酵产物测定 | 第47-48页 |
| ·可溶性糖测定 | 第48页 |
| ·秸秆总重量及各成分的变化 | 第48页 |
| ·纤维素酶活测定 | 第48-49页 |
| ·半纤维素酶活性粗酶活性的测定 | 第49-50页 |
| ·技术路线 | 第50-51页 |
| 3 NSC-7复合系的分解能力及特性研究 | 第51-58页 |
| ·结果与分析 | 第51-57页 |
| ·培养过程中OD和pH变化动态 | 第51-52页 |
| ·NSC-7对水稻秸秆的分解能力 | 第52-53页 |
| ·秸秆中纤维素、半纤维素、木质素和灰分的变化 | 第53页 |
| ·可溶性物质的动态变化 | 第53-54页 |
| ·水稻秸秆分解过程中发酵液中挥发性产物的变化 | 第54-56页 |
| ·林丹含量的变化 | 第56-57页 |
| ·本章小结 | 第57-58页 |
| 4 NSC-7复合系的菌种组成多样性研究 | 第58-78页 |
| ·结果与分析 | 第58-77页 |
| ·好氧条件分离菌株的基本信息 | 第58-62页 |
| ·单菌的理化性质测定 | 第62-69页 |
| ·11株单菌重新组合后分解纤维素情况 | 第69-70页 |
| ·滤纸平板培养基上NSC-7复合系分解情况 | 第70页 |
| ·16s rDNA克隆文库的构建及目的克隆的筛选 | 第70-72页 |
| ·系统发育分析 | 第72-75页 |
| ·厌氧条件下剩余菌信息 | 第75-77页 |
| ·本章小结 | 第77-78页 |
| 5 酶活性表达与菌种组成关系 | 第78-85页 |
| ·结果与分析 | 第78-84页 |
| ·NSC-7的4种纤维素酶活性 | 第78-79页 |
| ·半纤维素酶活性 | 第79-80页 |
| ·纤维素和半纤维素酶活性的比较 | 第80页 |
| ·NSC-7复合系的实际分解能力与酶活性 | 第80-81页 |
| ·分解过程中菌群的动态变化 | 第81-82页 |
| ·16S rDNA克隆文库的构建及菌种组成分析 | 第82页 |
| ·菌种动态变化与纤维素酶活性和分解能力的关系 | 第82-84页 |
| ·本章小结 | 第84-85页 |
| 6 高温对NSC-7复合系性质和菌群组成的影响 | 第85-96页 |
| ·结果与分析 | 第85-95页 |
| ·高温处理后热稳定性 | 第85-86页 |
| ·高温处理后pH值的变化 | 第86-87页 |
| ·高温处理后微生物量值的变化 | 第87-88页 |
| ·高温处理后纤维素酶活性和半纤维素酶活性 | 第88-89页 |
| ·高温处理后发酵液的测定 | 第89-91页 |
| ·高温处理后的DGGE图谱变化 | 第91-92页 |
| ·110℃高温处理后剩余菌克隆文库的构建 | 第92-93页 |
| ·110℃高温处理后剩余菌系统发育分析 | 第93页 |
| ·逆境条件剩余菌的基本信息 | 第93-95页 |
| ·本章小结 | 第95-96页 |
| 7 核心微生物种的追踪及其菌种间协作机理的研究 | 第96-103页 |
| ·结果与分析 | 第96-102页 |
| ·组合实验所需单菌的筛选 | 第96-97页 |
| ·"人工组合菌系"培养过程中pH值变化 | 第97-98页 |
| ·"人工组合菌系"纤维素酶活性变化 | 第98-99页 |
| ·"人工组合菌系"半纤维素酶活性变化 | 第99-100页 |
| ·分解后剩余物重量 | 第100-101页 |
| ·好氧单菌促进纤维素分解的探讨 | 第101-102页 |
| ·本章小结 | 第102-103页 |
| 结论与展望 | 第103-106页 |
| 参考文献 | 第106-115页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第115-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |