| 缩略语 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-11页 |
| 英文摘要 | 第11-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 实验材料 | 第19-21页 |
| 一、实验动物及细胞 | 第19页 |
| 二、主要药品及试剂 | 第19-20页 |
| 三、主要实验仪器及耗材 | 第20-21页 |
| 实验方法 | 第21-29页 |
| 一、EPD对xo-LDL和尿酸所致血管内皮细胞损伤的保护作用技术路线 | 第21页 |
| 二、EPD对ApoE~(-/-)小鼠动脉粥样硬化形成的影响技术路线 | 第21页 |
| 三、大鼠主动脉内皮细胞(rat aortic endothelial cells,RAEC)培养及鉴定 | 第21-22页 |
| 四、ECV304细胞培养 | 第22页 |
| 五、U937细胞培养 | 第22页 |
| 六、单核—内皮细胞粘附实验 | 第22页 |
| 七、单核细胞趋化实验 | 第22-23页 |
| 八、RT—PCR | 第23-24页 |
| 九、细胞培养液NO含量测定 | 第24页 |
| 十、ApoE~(-/-)小鼠分组与饲养 | 第24页 |
| 十一、血清TC含量测定 | 第24页 |
| 十二、血清NO含量测定 | 第24-25页 |
| 十三、主动脉AS病变观察 | 第25页 |
| 十四、主动脉血管壁内皮细胞形态学观察 | 第25页 |
| 十五、免疫组化 | 第25页 |
| 十六、T淋巴细胞增殖试验(MTS) | 第25-26页 |
| 十七、流式细胞仪分析 | 第26页 |
| 十八、ELSIA法细胞因子分析 | 第26-28页 |
| 十九、ApoE~(-/-)小鼠基因表达 | 第28页 |
| 二十、统计学处理 | 第28-29页 |
| 实验结果 | 第29-78页 |
| 第一部分 EPD对尿酸所致血管内皮细胞损伤的保护作用 | 第29-43页 |
| 第一章 EPD对尿酸诱导内皮细胞ICAM-1基因过度表达的影响 | 第29-33页 |
| 1.EPD对尿酸诱导内皮细胞ICAM-1基因过度表达的影响 | 第30-31页 |
| 2.EPD和槟榔碱抑制尿酸诱导内皮细胞ICAM-1基因过度表达作用的比较 | 第31页 |
| 3.阿托品对EPD抑制尿酸诱导内皮细胞ICAM-1基因过度表达作用的影响 | 第31-33页 |
| 第二章 EPD对尿酸诱导内皮细胞VCAM-1基因过度表达的影响 | 第33-36页 |
| 1.EPD对尿酸诱导内皮细胞VCAM-1基因过度表达的影响 | 第33页 |
| 2.EPD和槟榔碱抑制尿酸诱导内皮细胞VCAM-1基因过度表达作用的比较 | 第33-35页 |
| 3.阿托品对EPD抑制尿酸诱导内皮细胞VCAM-1基因过度表达作用的影响 | 第35-36页 |
| 第三章 EPD对尿酸诱导内皮细胞MCP-1基因过度表达的影响 | 第36-39页 |
| 1.EPD对尿酸诱导内皮细胞MCP-1基因过度表达的影响 | 第36页 |
| 2.EPD和槟榔碱抑制尿酸诱导内皮细胞MCP-1基因过度表达作用的比较 | 第36-38页 |
| 3.阿托品对EPD抑制尿酸诱导内皮细胞MCP-1基因过度表达作用的影响 | 第38-39页 |
| 第四章 EPD对尿酸减少内皮细胞释放NO作用的影响 | 第39-42页 |
| 1.EPD对尿酸减少内皮细胞NO释放量的影响 | 第39页 |
| 2.EPD和槟榔碱促进内皮细胞NO释放作用的比较 | 第39-41页 |
| 3.阿托品对EPD促进内皮细胞NO释放作用的影响 | 第41-42页 |
| 结语 | 第42-43页 |
| 第二部分 EPD对ox-LDL所致血管内皮细胞损伤的保护作用 | 第43-58页 |
| 第一章 EPD对ox-LDL诱导的单核—内皮细胞粘附和迁移的影响 | 第44-49页 |
| 1.EPD对单核—内皮细胞粘附的影响 | 第44页 |
| 2.EPD和槟榔碱抑制单核—内皮细胞粘附作用的比较 | 第44-45页 |
| 3.阿托品和L-NAME对EPD抑制单核—内皮细胞粘附作用的影响 | 第45页 |
| 4.EPD对单核细胞迁移的影响 | 第45-49页 |
| 第二章 EPD对ox-LDL诱导的内皮细胞粘附分子过度表达的影响 | 第49-55页 |
| 1.ox-LDL对内皮细胞粘附分子基因表达的影响 | 第50页 |
| 2.EPD对ox-LDL诱导内皮细胞粘附分子基因过度表达的影响 | 第50-51页 |
| 3.EPD对ox-LDL诱导内皮细胞粘附分子MCP-1蛋白过度表达的影响 | 第51-52页 |
| 4.阿托品对EPD抑制ox-LDL诱导内皮细胞粘附分子基因过度表达的影响 | 第52-55页 |
| 第三章 EPD对ox-LDL损伤的内皮细胞释放NO的影响 | 第55-57页 |
| 1.EPD对ox-LDL减少内皮细胞释放NO作用的影响 | 第55-56页 |
| 2.阿托品对EPD促进内皮细胞释放NO作用的影响 | 第56-57页 |
| 结语 | 第57-58页 |
| 第三部分 EPD抗动脉粥样硬化作用的体内实验验证及分子机理的初步分析 | 第58-78页 |
| 第一章 EPD对高脂饮食诱发ApoE~(-/-)小鼠动脉粥样硬化的影响 | 第59-62页 |
| 1.EPD对高脂饮食诱发ApoE~(-/-)小鼠高血脂的影响 | 第59-60页 |
| 2.EPD对高血脂诱发ApoE~(-/-)小鼠动脉粥样硬化的影响 | 第60页 |
| 3.EPD对高血脂诱发ApoE~(-/-)小鼠动脉粥样硬化时内皮细胞形态学变化的影响 | 第60-62页 |
| 第二章 EPD抗ApoE~(-/-)小鼠动脉粥样硬化分子机理的分析 | 第62-77页 |
| 1.EPD对ApoE~(-/-)小鼠动脉粥样硬化时炎性免疫反应的影响 | 第63-71页 |
| (1) EPD对主动脉粥样硬化斑块处T细胞浸润的影响 | 第63-64页 |
| (2) EPD对主动脉血管壁粘附分子基因表达的影响 | 第64-66页 |
| (3) EPD对脾脏T淋巴细胞增殖、CD4+/CD8+比值和B淋巴细胞占脾细胞百分比的影响 | 第66-67页 |
| (4) EPD对Th1因子IFNγ、IL-12和Th2因子IL-4、IL-10表达的影响 | 第67-69页 |
| (5) EPD对主动脉血管壁协同刺激因子基因表达的影响 | 第69-71页 |
| 2.EPD对ApoE~(-/-)小鼠动脉粥样硬化时血清NO含量的影响 | 第71页 |
| 3.EPD对NNMR和重要炎性信号分子NF-κB、PPARγ表达的影响 | 第71-74页 |
| (1) EPD对NNMR基因表达的影响 | 第71页 |
| (2) EPD对主动脉血管壁核因子NF-κB和PPARγ表达的影响 | 第71-74页 |
| 4.EPD对脾脏T淋巴细胞增殖和INFγ分泌的影响 | 第74-77页 |
| (1) EPD对ApoE~(-/-)小鼠脾脏T淋巴细胞增殖和INFγ分泌的影响 | 第74-75页 |
| (2) EPD对C57BL/6J小鼠脾脏T淋巴细胞增殖和INFγ分泌的影响 | 第75-77页 |
| 结语 | 第77-78页 |
| 讨论 | 第78-88页 |
| 一、血管内皮细胞与动脉粥样硬化的关系 | 第78-80页 |
| 二、炎性免疫反应与动脉粥样硬化的关系 | 第80-81页 |
| 三、EPD抗动脉粥样硬化作用的特点 | 第81-88页 |
| 研究总结 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-98页 |
| 文献综述 | 第98-103页 |
| 发表论文 | 第103-110页 |
| 个人简历 | 第110-112页 |
| 致谢 | 第112页 |
