| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 第一章 骨髓间充质干细胞的研究进展 | 第12-26页 |
| ·MSCs 表形特征 | 第12-13页 |
| ·MSCs 表达的特异性抗原及细胞因子 | 第12页 |
| ·MSCs 表达的细胞因子和生长因子受体 | 第12-13页 |
| ·MSCs 表达的黏附相关分子 | 第13页 |
| ·MSCs 表达的胞外基质 | 第13页 |
| ·MSCs 的可塑性 | 第13-14页 |
| ·MSCs 的生物学性状 | 第14-15页 |
| ·MSCs 的增殖能力 | 第14页 |
| ·MSCs 的超微结构 | 第14页 |
| ·MSCs 的细胞周期 | 第14-15页 |
| ·MSCs 的形态 | 第15页 |
| ·MSCs 分离，培养，扩增 | 第15-16页 |
| ·几种MSCs 分离方法的比较 | 第15页 |
| ·不同动物MSCs 的分离 | 第15-16页 |
| ·鉴定 | 第16-17页 |
| ·形态学 | 第16页 |
| ·细胞表面表达物 | 第16页 |
| ·分化潜能 | 第16-17页 |
| ·MSCs 分化为神经细胞及其机制的研究 | 第17-20页 |
| ·MSCs 诱导分化为神经细胞 | 第17-19页 |
| ·在体内分化为神经元及脑保护作用 | 第17-18页 |
| ·在体外分化为神经元及分化的神经元功能 | 第18-19页 |
| ·MSCs 向神经元样细胞分化的微环境调控机制 | 第19-20页 |
| ·几种生长因子诱导分化中信号传导通路的作用机制 | 第19-20页 |
| ·临床应用及前景分析 | 第20-26页 |
| ·MSCs 是神经系统细胞治疗的理想载体 | 第21-22页 |
| ·MSCs 应用于脑病临床 | 第22-23页 |
| ·直接移植 | 第22页 |
| ·MSCs 经处理后再移植 | 第22-23页 |
| ·MSCs 在脑病治疗的机制上的研究 | 第23-24页 |
| ·MSCs 的应用前景 | 第24-26页 |
| 第二章 小鼠MSCs 的分离培养及几种生物学特性 | 第26-40页 |
| ·材料 | 第26-28页 |
| ·试验动物 | 第26-27页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第27-28页 |
| ·主要试剂 | 第27-28页 |
| ·主要仪器 | 第28页 |
| ·几种溶液的配制方法 | 第28页 |
| ·方法 | 第28-30页 |
| ·股骨条件培养液的制备 | 第28-29页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞的分离 | 第29页 |
| ·全骨髓法 | 第29页 |
| ·密度梯度离心法 | 第29页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞的原代培养 | 第29页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞的传代培养 | 第29-30页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞形态学观察 | 第30页 |
| ·瑞氏-姬姆萨复合染色 | 第30页 |
| ·细胞冷冻和解冻 | 第30页 |
| ·细胞生长曲线测定 | 第30页 |
| ·碱性磷酸酶染色 | 第30页 |
| ·结果 | 第30-33页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞原代培养形态学观察结果 | 第30-31页 |
| ·全骨髓法 | 第30-31页 |
| ·密度梯度离心法 | 第31页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞传代培养形态学观察结果 | 第31页 |
| ·瑞氏-姬姆萨复合染色 | 第31页 |
| ·细胞冻存与复苏 | 第31-32页 |
| ·细胞生长曲线 | 第32-33页 |
| ·碱性磷酸酶染色 | 第33页 |
| ·讨论 | 第33-39页 |
| ·对比不同方法分离小鼠骨髓间充质干细胞 | 第33-35页 |
| ·不同分离方法的比较 | 第33-34页 |
| ·Percoll 和Ficoll 两种梯度分离液的比较 | 第34页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞的分离 | 第34-35页 |
| ·影响骨髓间充质干细胞生长的几种因素 | 第35-36页 |
| ·周龄对骨髓间充质干细胞生长的影响 | 第35页 |
| ·血清对骨髓间充质干细胞生长的影响 | 第35-36页 |
| ·传代密度对骨髓间充质干细胞生长的影响 | 第36页 |
| ·不同培养液对骨髓间充质干细胞生长的影响 | 第36页 |
| ·瑞氏-姬姆萨复合染色 | 第36页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞冷冻复苏试验 | 第36-37页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞的生长曲线 | 第37页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞碱性磷酸酶染色 | 第37页 |
| ·有关小鼠骨髓间充质干细胞能在体外大量增殖的分子机制 | 第37页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞的脂肪分化及其机制 | 第37-39页 |
| ·小结 | 第39-40页 |
| 第三章 小鼠骨髓MSCs 定向诱导分化为神经元样细胞 | 第40-50页 |
| ·材料 | 第40-42页 |
| ·试验动物 | 第40页 |
| ·主要试剂及主要溶液配制方法 | 第40-42页 |
| ·主要试剂 | 第40-41页 |
| ·几种溶液的配制方法 | 第41-42页 |
| ·主要仪器 | 第42页 |
| ·方法 | 第42-44页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞分离及培养 | 第42-43页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞体外定向诱导分化为神经元样细胞 | 第43页 |
| ·定向诱导分化试验分组 | 第43页 |
| ·定向诱导分化试验程序 | 第43页 |
| ·定向诱导分化试验中细胞观察 | 第43页 |
| ·免疫细胞化学鉴定 | 第43-44页 |
| ·结果 | 第44-45页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞体外定向诱导分化为神经元样细胞 | 第44-45页 |
| ·免疫细胞化学检测 | 第45页 |
| ·讨论 | 第45-49页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞培养 | 第45-47页 |
| ·小鼠骨髓间充质干细胞定向诱导分化为神经元样细胞 | 第47-48页 |
| ·免疫细胞化学染色 | 第48-49页 |
| ·小结 | 第49-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 下一步研究工作设想 | 第51-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 缩略词 | 第60-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 个人简历 | 第63页 |
