| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 文献综述 | 第12-26页 |
| 1 谷氨酰胺转胺酶的分类 | 第12-17页 |
| ·分泌型TGASE(SECRETORY TRANSGLUTAMINASE) | 第13页 |
| ·组织型TGASE(TISSUE TGASE) | 第13-14页 |
| ·凝血因子十三(FACTOR XIII) | 第14页 |
| ·血球型TGASE( HEMOCYEE TGASE) | 第14页 |
| ·角质细胞TGASE(KERATINOCYTE TGASE) | 第14页 |
| ·表皮型TＧASE(EPIDEMAL TＧASE) | 第14-15页 |
| ·微生物型TGASE(MICROBIAL TGASE) | 第15-16页 |
| ·其它来源的TGASE | 第16-17页 |
| 2 微生物谷氨酰胺转胺酶的性质 | 第17-18页 |
| ·谷氨酰胺转胺酶的理化性质 | 第17页 |
| ·谷氨酰胺转胺酶的分子结构 | 第17-18页 |
| 3 谷氨酰胺转胺酶活力测定 | 第18-19页 |
| 4 谷氨酰胺转胺酶的作用机理 | 第19-20页 |
| 5 谷氨酰胺转胺酶的生产 | 第20-22页 |
| ·谷氨酰胺转胺酶的主要生产方法 | 第20-21页 |
| ·谷氨酰胺转胺酶的生产菌株 | 第21页 |
| ·发酵工艺 | 第21-22页 |
| ·提取工艺 | 第22页 |
| 6 谷氨酰胺转胺酶的应用 | 第22-24页 |
| ·肉制品加工 | 第22-23页 |
| ·乳品加工 | 第23页 |
| ·水产加工 | 第23-24页 |
| 7 谷氨酰胺转胺酶的研究现状及发展趋势 | 第24-26页 |
| 第一章 谷氨酰胺转胺酶发酵条件的优化 | 第26-47页 |
| 1 材料和方法 | 第26-32页 |
| ·材料 | 第26-28页 |
| ·方法 | 第28-32页 |
| 2 结果与分析 | 第32-44页 |
| ·摇瓶培养条件优化 | 第32-36页 |
| ·产酶培养基优化 | 第36-38页 |
| ·正交试验结果及最佳培养基、最优培养条件的确定 | 第38-41页 |
| ·5-200L罐上逐级放大发酵实验结果 | 第41-44页 |
| 3 讨论 | 第44-47页 |
| ·培养基的优化 | 第44-45页 |
| ·培养条件的优化 | 第45-47页 |
| 第二章 谷氨酰胺转胺酶的分离、纯化及部分性质研究 | 第47-58页 |
| 1 材料与方法 | 第47-50页 |
| ·材料 | 第47页 |
| ·试剂 | 第47-48页 |
| ·仪器 | 第48页 |
| ·方法 | 第48-50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-58页 |
| ·提取及纯化各步酶活回收率 | 第50-51页 |
| ·CM-纤维素层析 | 第51页 |
| ·葡聚糖G-75层析 | 第51-52页 |
| ·SDS-PAGE检测 | 第52-54页 |
| ·部分酶学性质 | 第54-58页 |
| 第三章 谷氨酰胺转胺酶的应用研究 | 第58-66页 |
| 1 材料与方法 | 第58-60页 |
| ·材料 | 第58页 |
| ·方法 | 第58-60页 |
| 2 结果与分析 | 第60-66页 |
| ·不同反应条件对聚合的影响 | 第60-63页 |
| ·改性后酪蛋白特性的改变 | 第63-65页 |
| ·小结 | 第65-66页 |
| 本论文的主要结论 | 第66-67页 |
| 附录 | 第67-70页 |
| 参考文献 | 第70-73页 |
| 硕士学习期间发表及投递的文章 | 第73页 |
