中文摘要 | 第1-8页 |
英文缩写词 | 第8-10页 |
1.文献综述 | 第10-35页 |
2.前言 | 第35-36页 |
3.材料与方法 | 第36-50页 |
·主要试剂及仪器 | 第36-37页 |
·主要溶液的配制 | 第37-38页 |
·整体动物实验 | 第38-41页 |
·动物模型 | 第38页 |
·血流动力学指标测定 | 第38页 |
·IAA结构观察 | 第38-39页 |
·IAA分类计数 | 第38-39页 |
·IAA内膜面积测量及EC核计数 | 第39页 |
·IAA超微结构观察 | 第39页 |
·肺外动脉结构与相应功能的观察 | 第39-41页 |
·超微结构观察 | 第39-40页 |
·离体肺动脉环Ach内皮依赖性舒张反应的测定 | 第40页 |
·肺动脉壁羟脯氨酸含量测定 | 第40-41页 |
·离体细胞培养 | 第41-49页 |
·成年牛、新生小牛PASMC体外培养及生长曲线 | 第41-43页 |
·贴块法培养PASMC | 第41-42页 |
·绘制生长曲线 | 第42-43页 |
·培养PASMC缺氧模型的建立及有关指标测定、药物干预实验 | 第43-45页 |
·相对生长静息PASMC的获取 | 第43页 |
·缺氧模型 | 第43页 |
·~3H-TdR参入法检测PASMC DNA合成 | 第43页 |
·DNA含量测定 | 第43-44页 |
·影响PASMC ~3H-TdR参入的药物干预实验 | 第44-45页 |
·培养PASMC透射电镜标本制备 | 第45页 |
·新生小牛、成年牛PAEC培养、缺氧实验、缺氧EC条件培养液(HECCM)对培养PASMC ~3H-TdR参入的影响 | 第45页 |
·PAEC体外培养 | 第45页 |
·缺氧实验 | 第45页 |
·HECCM的收集及对培养PASMC ~3H-TdR参入的影响 | 第45页 |
·利用核酸分子原位杂交技术检测培养PASHC内原癌基因mRNA表达 | 第45-47页 |
·平滑肌(SM)α-actin及非肌性(NM)β-actin基因质粒转化、扩增 | 第45-46页 |
·光敏生物素直接标记SM α-actin和NM β-actin目的基因质粒DNA | 第46-47页 |
·培养PASMC原位杂交 | 第47页 |
·培养PASMC总RNA的c-myc斑点及Northern膜印迹杂交 | 第47-49页 |
·细胞总RNA的提取 | 第47页 |
·c-myc斑点杂交 | 第47-48页 |
·Northern膜印迹杂交 | 第48页 |
·用随机寡核苷酸引物合成均一标记的c-myo cDNA探针 | 第48页 |
·分子杂交及放射自显影 | 第48-49页 |
·数据处理 | 第49-50页 |
4.结果 | 第50-73页 |
·IAA肌化与肺循环血流动力学变化趋势的关系 | 第50-52页 |
·肺动脉中膜SMC表型及肺动脉壁羟脯氨酸含量变化与PAP的关系 | 第52-53页 |
·肺动脉EC结构及Ach内皮依赖性舒张反应的动态变化 | 第53-56页 |
·缺氧时培养PAEC的变化及PAEC对SMC增殖的影响 | 第56-59页 |
·缺氧对培养PASMC的直接影响 | 第59-72页 |
·缺氧对PASMC增殖的影响 | 第59-63页 |
·缺氧对PASMC表型的影响 | 第63-65页 |
·缺氧对施用了细胞信息传导途径干预药物后PASMC ~3H-TdR参入的影响 | 第65-67页 |
·异搏定、H_7 | 第65页 |
·PMA、EGF | 第65-67页 |
·EGF+PMA、异搏定+PMA复合作用 | 第67页 |
·缺氧对PASMC c-myc mRNA表达的影响 | 第67-72页 |
·-3对PASMC ~3H-TdR参入的影响 | 第72-73页 |
附:1.电镜照片插图 | 第73-84页 |
2.照片说明 | 第82-84页 |
5.讨论 | 第84-89页 |
·PASMC的结构变化在缺氧性肺动脉高压发生、发展中的作用 | 第84-85页 |
·缺氧时PASMC结构变化的原因 | 第85-89页 |
·PAEC结构和功能的变化对PASMC的影响 | 第85-86页 |
·缺氧对SMC结构变化的直接影响及其作用途径初探 | 第86-89页 |
6.总结 | 第89-90页 |
7.参考文献 | 第90-98页 |
8.英文摘要 | 第98-102页 |
已发表和待发表的研究论文及论文摘要 | 第102-105页 |
致谢 | 第105页 |