高羊茅(Festuca arundinacea Schreb.)高频再生体系的建立及转基因初探
摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第1章 文献综述 | 第9-23页 |
·高羊茅概况 | 第9-10页 |
·高羊茅的植物学特性 | 第9页 |
·高羊茅的生物学特性 | 第9页 |
·高羊茅的应用和发展前景 | 第9-10页 |
·草坪草育种研究概况 | 第10-14页 |
·传统育种与组织培养技术 | 第10页 |
·草坪草组织培养技术的种类 | 第10-13页 |
·高羊茅组织培养研究进展 | 第13-14页 |
·转基因技术在草坪草中的应用 | 第14-15页 |
·原生质体DNA直接吸入法 | 第14页 |
·基因枪法 | 第14页 |
·碳化硅纤维介导转化法 | 第14页 |
·农杆菌介导转化法 | 第14-15页 |
·影响草坪草转基因的因素 | 第15-16页 |
·再生体系 | 第15页 |
·转化细胞的筛选和检测 | 第15-16页 |
·转基因过程中存在的问题及解决对策 | 第16-18页 |
·体细胞无性系变异 | 第16-17页 |
·转基因效率 | 第17页 |
·转基因植株的稳定性 | 第17页 |
·转基因对环境的影响 | 第17-18页 |
·转入的基因 | 第18页 |
·高羊茅转基因技术的研究 | 第18-23页 |
·选择压的确定 | 第19页 |
·受体材料感受态的获得 | 第19页 |
·外植体的预培养 | 第19-20页 |
·浸染条件的选择 | 第20页 |
·共培养条件的选择 | 第20-23页 |
第2章 引言 | 第23-25页 |
第3章 材料与方法 | 第25-31页 |
·实验材料 | 第25-26页 |
·植物材料 | 第25页 |
·菌株和质粒 | 第25页 |
·主要仪器设备及试剂 | 第25页 |
·常用试剂 | 第25-26页 |
·基本培养基 | 第26页 |
·实验方法 | 第26-31页 |
·培养条件 | 第26-27页 |
·无菌材料的获得 | 第27页 |
·再生体系的建立 | 第27页 |
·转化方法和转化条件的研究 | 第27-30页 |
·转基因植株的检测 | 第30-31页 |
第4章 结果与分析 | 第31-47页 |
·高羊茅(夜明珠2号与新秀)再生体系的优化 | 第31-38页 |
·不同植物生长调节剂组合对愈伤组织诱导的影响 | 第31-34页 |
·外植体的不同处理方法对愈伤组织诱导的影响 | 第34页 |
·不同植物生长凋节剂组合对愈伤组织分化的影响 | 第34-36页 |
·不同植物生长调节剂组合对高羊茅生根的影响 | 第36-38页 |
·遗传转化体系的建立 | 第38-47页 |
·G418选择压的确定 | 第38页 |
·G418对生根的影响 | 第38-39页 |
·Cef抑菌浓度的确定 | 第39页 |
·Cef对愈伤组织诱导的影响 | 第39-40页 |
·预培养时间对转化的影响 | 第40页 |
·浸染液对转化的影响 | 第40-41页 |
·农杆菌浸染时间对转化的影响 | 第41页 |
·不同共培养因素对转化的影响 | 第41-43页 |
·添加乙酰丁香酮(AS)对转化的影响 | 第43-44页 |
·延迟筛选培养对转化的影响 | 第44-45页 |
·gus基因瞬时表达的检测 | 第45-47页 |
第5章 讨论 | 第47-51页 |
·高羊茅高频再生体系的建立 | 第47-48页 |
·外植体的选择 | 第47页 |
·植物生长调节剂对高羊茅愈伤组织诱导的影响 | 第47-48页 |
·影响遗传转化体系建立的因素探讨 | 第48-51页 |
·高羊茅对G418和Cef的敏感性 | 第48页 |
·预培养对转化的影响 | 第48页 |
·共培养因素对转化的影响 | 第48-49页 |
·乙酰丁香酮的使用 | 第49页 |
·延迟筛选培养对转化的影响 | 第49-51页 |
第6章 小结 | 第51-53页 |
·高羊茅高频再生体系的建立 | 第51页 |
·高羊茅愈伤组织的诱导 | 第51页 |
·高羊茅愈伤组织的分化 | 第51页 |
·高羊茅幼苗的生根 | 第51页 |
·高羊茅遗传转化体系的初步探讨 | 第51-53页 |
参考文献 | 第53-59页 |
缩略词表 | 第59-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
在学期间发表文章 | 第61页 |