| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-16页 |
| 中英文缩略词表 | 第16-17页 |
| 引言 | 第17-22页 |
| 第一部分 密蒙花总黄酮提取工艺的初步优化研究及本研究用药的制备 | 第22-44页 |
| 1.材料与方法 | 第22-30页 |
| ·药材来源 | 第22页 |
| ·仪器 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-30页 |
| 2.结果 | 第30-41页 |
| ·密蒙花中蒙花苷的含量测定方法的确定 | 第30-34页 |
| ·密蒙花总黄酮提取工艺的初步优化过程 | 第34-41页 |
| 3.讨论 | 第41-43页 |
| ·第一次小试 | 第41-42页 |
| ·第二次小试 | 第42-43页 |
| 4.结论 | 第43-44页 |
| 第二部分 密蒙花总黄酮干预去势导致干眼症雄鼠泪腺Bax mRNA、bc1-2 mRNA及雄激素受体表达的研究 | 第44-71页 |
| 1.材料与方法 | 第44-54页 |
| ·实验动物 | 第44页 |
| ·分组 | 第44页 |
| ·雄激素缺乏导致干眼症动物模型的建立 | 第44-46页 |
| ·给药方法 | 第46-47页 |
| ·取材及指标测定 | 第47-54页 |
| 2.结果 | 第54-64页 |
| ·荧光素染色 | 第54页 |
| ·基础泪液分泌量比较 | 第54-55页 |
| ·泪膜稳定性比较 | 第55-56页 |
| ·电镜观察泪腺超微结构结果 | 第56-57页 |
| ·AR在泪腺中的表达 | 第57-58页 |
| ·凋亡相关基因蛋白Bax mRNA及bc1-2 mRNA的表达 | 第58-64页 |
| 3.讨论 | 第64-70页 |
| ·密蒙花总黄酮治疗雄激素水平下降所致干眼症的优势所在 | 第64-65页 |
| ·雄激素水平下降动物模型的建立 | 第65-67页 |
| ·密蒙花总黄酮拟雄激素效应 | 第67-68页 |
| ·密蒙花总黄酮拟雄激素效应后的抑制细胞凋亡及疗效评价 | 第68-70页 |
| 4.结论 | 第70-71页 |
| 第三部分 密蒙花总黄酮含药血浆干预干眼症细胞模型AR mRNA表达及对激活STAT1信号传导途径的影响的研究 | 第71-100页 |
| 1.材料与方法 | 第71-88页 |
| ·实验动物 | 第71页 |
| ·大鼠泪腺上皮细胞的原代培养 | 第71-75页 |
| ·密蒙花总黄酮含药血浆的制备 | 第75-76页 |
| ·含药血浆加入量的摸索(MTT法细胞毒实验) | 第76-78页 |
| ·建立细胞模型及含药血浆干预 | 第78-79页 |
| ·氟他胺阻断雄激素受体与配体的结合 | 第79页 |
| ·指标检测 | 第79-88页 |
| 2.结果 | 第88-94页 |
| ·泪腺上皮细胞培养 | 第88页 |
| ·大鼠泪腺上皮细胞的鉴定 | 第88页 |
| ·含药血浆加入量的摸索 | 第88-90页 |
| ·含药血浆干预后STAT1在泪腺上皮细胞中的表达 | 第90页 |
| ·含药血浆干预后AR、STAT1磷酸化蛋白在泪腺上皮细胞中的表达 | 第90-92页 |
| ·氟他胺干预后AR、STAT1磷酸化蛋白的表达 | 第92-94页 |
| 3.讨论 | 第94-99页 |
| ·大鼠泪腺上皮细胞体外分离及培养的体会 | 第94-95页 |
| ·MTT法进行密蒙花总黄酮含药血浆加入量的摸索 | 第95-96页 |
| ·雄激素水平下降致干眼症的细胞凋亡细胞模型的建立 | 第96-97页 |
| ·含药血浆干预后AR表达量变化的意义 | 第97-98页 |
| ·含药血浆干预后STAT1及STAT1磷酸化蛋白表达的意义 | 第98页 |
| ·雄激素受体阻滞剂干预后AR、STAT1磷酸化蛋白表达的意义 | 第98-99页 |
| 4.结论 | 第99-100页 |
| 全文总结 | 第100-102页 |
| 1.小结 | 第100-101页 |
| 2.有待进一步研究的内容 | 第101-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-107页 |
| 附录:综述 | 第107-115页 |
| 附图 | 第115-124页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第124页 |
