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脑出血过程中占位效应的力学模拟及神经损伤作用研究

中文摘要第3-5页
英文摘要第5-13页
英汉缩略名词对照表第13-15页
1 绪论第15-23页
    1.1 课题研究背景第15-17页
    1.2 国内外研究现状第17-20页
        1.2.1 ICH的研究现状第17-19页
        1.2.2 力学刺激与脑部疾病的关系第19-20页
    1.3 科学问题的提出及研究意义第20页
    1.4 研究内容和技术路线第20-22页
    1.5 论文的创新点第22-23页
2 体外静水压对原代神经元细胞的损伤第23-45页
    2.1 引言第23-24页
    2.2 动物、试剂和仪器第24-27页
        2.2.1 动物第24页
        2.2.2 试剂第24-26页
        2.2.3 仪器第26-27页
    2.3 溶液的配制第27-28页
    2.4 实验方法第28-34页
        2.4.1 SD大鼠大脑皮层神经元细胞原代培养第28-29页
        2.4.2 体外可控静水压加载装置的构建以及细胞模型的建立第29-30页
        2.4.3 细胞活性检测第30页
        2.4.4 细胞外LDH活性的检测第30页
        2.4.5 细胞凋亡与坏死双染第30-31页
        2.4.6 荧光定量-PCR第31-32页
        2.4.7 Western Blotting第32-34页
        2.4.8 细胞免疫荧光第34页
        2.4.9 统计分析第34页
    2.5 实验结果与讨论第34-43页
        2.5.1 体外可控的静水压加载装置的构建以及数据采集第34页
        2.5.2 梯度静水压对原代神经元细胞的影响第34-36页
        2.5.3 不同浓度血红蛋白对原代神经元细胞的影响第36-38页
        2.5.4 静水压与血红蛋白共同作用下对原代神经元细胞的影响第38-39页
        2.5.5 静水压与血红蛋白对原代神经元细胞结构的影响第39-41页
        2.5.6 静水压与血红蛋白对原代神经元细胞凋亡相关蛋白的影响第41-43页
    2.6 小结第43-45页
3 脑出血过程中占位效应对神经组织的损伤第45-63页
    3.1 引言第45页
    3.2 动物、试剂和仪器第45-47页
        3.2.1 动物第45页
        3.2.2 试剂第45-46页
        3.2.3 仪器第46-47页
    3.3 溶液的配制第47页
    3.4 实验方法第47-52页
        3.4.1 ICH动物模型的建立第47-48页
        3.4.2 小动物核磁共振成像第48页
        3.4.3 组织LDH释放的检测第48-49页
        3.4.4 脑水肿检测第49页
        3.4.5 冷冻切片第49-50页
        3.4.6 铁染色第50页
        3.4.7 荧光定量PCR第50页
        3.4.8 Western Blotting第50-51页
        3.4.9 免疫荧光第51页
        3.4.10 石蜡切片以及H&E染色第51-52页
        3.4.11 统计分析第52页
    3.5 实验结果与讨论第52-61页
        3.5.1 ICH占位效应动物模型的构建第52-53页
        3.5.2 神经组织结构的影响第53-56页
        3.5.3 脑组织中LDH的释放第56页
        3.5.4 占位效应周围脑组织的铁沉积以及铁相关蛋白的表达第56-57页
        3.5.5 脑水肿的影响第57-58页
        3.5.6 神经组织凋亡的影响第58-61页
    3.6 小结第61-63页
4 Piezos蛋白在脑出血后静水压传导中的作用第63-79页
    4.1 引言第63-64页
    4.2 动物、试剂和仪器第64-66页
        4.2.1 动物第64页
        4.2.2 试剂第64-65页
        4.2.3 仪器第65-66页
    4.3 实验方法第66-67页
        4.3.1 SD大鼠大脑皮层神经元细胞原代培养第66页
        4.3.2 ICH占位效应动物模型的建立第66页
        4.3.3 GsMTx-4和盐酸尼卡地平对体外静水压模型中原代神经元细胞的影响第66页
        4.3.4 细胞活性检测第66页
        4.3.5 钙染色第66-67页
        4.3.6 免疫荧光第67页
        4.3.7 Western Blotting第67页
        4.3.8 统计分析第67页
    4.4 实验结果与讨论第67-77页
        4.4.1 Piezo-1和Piezo-2蛋白在ICH后血肿周围脑组织中的表达第67-68页
        4.4.2 体外模型中静水压导致的原代神经元细胞Piezo-2蛋白的表达第68-69页
        4.4.3 体内模型中占位效应周围神经组织Piezo-2蛋白的表达第69-70页
        4.4.4 盐酸尼卡地平和GsMTx-4对Piezo-2蛋白表达的抑制作用第70-71页
        4.4.5 盐酸尼卡地平和GsMTx-4对静水压作用下原代神经元细胞活性的影响第71-72页
        4.4.6 盐酸尼卡地平和GsMTx-4对静水压作用下胞内钙离子的影响第72-73页
        4.4.7 盐酸尼卡地平和GsMTx-4对静水压作用下细胞形态的影响第73页
        4.4.8 盐酸尼卡地平和GsMTx-4对神经元细胞凋亡的影响第73-77页
    4.5 小结第77-79页
5 电荷驱动的盐酸尼卡地平纳米颗粒对脑出血后静水压力学损伤的干预第79-103页
    5.1 引言第79-80页
    5.2 动物、试剂和仪器第80-82页
        5.2.1 动物第80-81页
        5.2.2 试剂第81页
        5.2.3 仪器第81-82页
    5.3 溶液的配制第82页
    5.4 实验方法第82-85页
        5.4.1 纳米颗粒的制备第82页
        5.4.2 FITC标记的壳聚糖纳米颗粒的制备第82-83页
        5.4.3 HAMC原位凝胶的制备第83页
        5.4.4 外电荷层的制备第83页
        5.4.5 形貌观察第83页
        5.4.6 粒径和Zeta电位分析第83页
        5.4.7 流变学测定第83页
        5.4.8 体外纳米颗粒运动实验第83-84页
        5.4.9 体外药物释放第84页
        5.4.10 药物的HPLC检测第84页
        5.4.11 药代动力学实验第84-85页
        5.4.12 ICH模型的建立以及药物干预第85页
        5.4.13 脑水肿检测第85页
        5.4.14 LDH释放检测第85页
        5.4.15 铁染色第85页
        5.4.16 免疫荧光第85页
        5.4.17 Western Blotting第85页
        5.4.18 H&E染色第85页
        5.4.19 统计分析第85页
    5.5 实验结果和讨论第85-101页
        5.5.1 剂型的表征第85-87页
        5.5.2 体外纳米颗粒的运动实验第87-88页
        5.5.3 体外药物释放第88-90页
        5.5.4 体内药物释放以及组织分布第90-92页
        5.5.5 神经组织结构的影响第92-94页
        5.5.6 脑水肿和LDH释放的影响第94-95页
        5.5.7 凋亡的影响第95-97页
        5.5.8 铁沉积和铁转运相关蛋白的表达第97-98页
        5.5.9 Piezos蛋白的表达第98-100页
        5.5.10 肺组织的损伤第100-101页
    5.6 小结第101-103页
6 主要结果及后续工作建议第103-107页
    6.1 主要结果及讨论第103-105页
        6.1.1 ICH过程中静水压对原代神经元细胞和神经组织的影响第103页
        6.1.2 Piezo-2蛋白在ICH后静水压传导中的作用第103-104页
        6.1.3 NCD通过抑制Piezo-2蛋白表达而拮抗静水压导致的神经损伤第104-105页
    6.2 后续工作建议第105-107页
7 文献综述第107-117页
    7.1 介绍第107页
    7.2 静水压与脑疾病的关系及其相关的力学模拟装置第107页
    7.3 拉伸/压缩力与脑疾病的关系及其相关的力学模拟装置第107-111页
    7.4 剪切力与脑疾病的关系及其相关的力学模拟装置第111页
    7.5 环境粗糙度与脑疾病的关系及其研究第111-115页
    7.6 小结第115-117页
致谢第117-119页
参考文献第119-133页
附录第133-134页
    A.作者在攻读博士期间科研成果第133-134页
    B.作者在攻读博士期间参加的科研项目情况第134页

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