| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 第一章 前言 | 第8-25页 |
| 1.1 绪论 | 第8-9页 |
| 1.2 荧光探针 | 第9-11页 |
| 1.2.1 荧光探针的结构 | 第9页 |
| 1.2.2 荧光探针的响应机理 | 第9-11页 |
| 1.3 硝基还原酶探针的研究进展及意义 | 第11-17页 |
| 1.4 硫化氢探针的研究进展及意义 | 第17-25页 |
| 第二章 基于苯并吡喃腈衍生物的硝基还原酶/低氧荧光探针的研究 | 第25-47页 |
| 2.1 概论 | 第25页 |
| 2.2 探针分子的设计 | 第25-31页 |
| 2.2.1 苯并吡喃腈类荧光探针的研究进展 | 第25-30页 |
| 2.2.2 探针分子的设计原理 | 第30-31页 |
| 2.3 实验部分 | 第31-33页 |
| 2.3.1 实验原料以及仪器 | 第31-32页 |
| 2.3.2 NRP-1的合成路线 | 第32页 |
| 2.3.3 NRP-1与硝基还原酶作用的机理 | 第32-33页 |
| 2.4 NRP-1的光谱测试方法: | 第33-35页 |
| 2.4.1 PBS缓冲液的配制 | 第33页 |
| 2.4.2 NADH溶液的配制 | 第33页 |
| 2.4.3 NRP-1的荧光光谱测试 | 第33-34页 |
| 2.4.4 NRP-1的荧光选择性测试 | 第34页 |
| 2.4.5 NRP-1自身,NRP-1与NADH反应,NRP-1与NADH和NTR反应,荧光团14自身的紫外光谱测试 | 第34页 |
| 2.4.6 NRP-1在不同pH值的测试溶剂中对NTR的荧光响应 | 第34-35页 |
| 2.4.7 NRP-1检测极限的测定 | 第35页 |
| 2.5 NRP-1的生物测试方法 | 第35-37页 |
| 2.5.1 CCK-8细胞毒性试验 | 第35页 |
| 2.5.2 NRP-1在Hi5细胞中的荧光呈像实验 | 第35-36页 |
| 2.5.3 NRP-1对肿瘤特异性标记实验 | 第36-37页 |
| 2.6 实验结果与讨论 | 第37-46页 |
| 2.6.1 NRP-1的光谱性质研究 | 第37-42页 |
| 2.6.2 NRP-1的生物测试研究 | 第42-46页 |
| 2.7 本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 基于花青染料的硫化氢近红外荧光探针的合成以及生物应用研究 | 第47-68页 |
| 3.1 概论 | 第47页 |
| 3.2 探针分子的设计 | 第47-50页 |
| 3.2.1 花青染料类荧光团的简介与发展 | 第47-49页 |
| 3.2.2 探针分子的设计原理 | 第49-50页 |
| 3.3 化合物Cy-S-S的合成 | 第50-54页 |
| 3.3.1 化合物b的合成 | 第51页 |
| 3.3.2 化合物c的合成 | 第51-52页 |
| 3.3.3 化合物d的合成 | 第52页 |
| 3.3.4 化合物Cy的合成 | 第52-53页 |
| 3.3.5 Cy-S-S的合成 | 第53-54页 |
| 3.4 Cy-S-S的光谱测试方法 | 第54-55页 |
| 3.4.1 HEPES缓冲液的配制 | 第54页 |
| 3.4.2 M9缓冲液的配制 | 第54页 |
| 3.4.3 Cy-S-S的荧光,紫外光谱测试 | 第54页 |
| 3.4.4 Cy-S-S的选择性测试 | 第54-55页 |
| 3.4.5 Cy-S-S检测极限的测定 | 第55页 |
| 3.4.6 Cy-S-S的竞争实验测试 | 第55页 |
| 3.5 Cy-S-S的生物测试方法 | 第55-56页 |
| 3.5.1 Cy-S-S在Hi5细胞中的共聚焦呈像 | 第55-56页 |
| 3.5.2 Cy-S-S在线虫中的荧光呈像 | 第56页 |
| 3.6 实验结果与讨论 | 第56-67页 |
| 3.6.1 Cy-S-S的光谱测试实验结果 | 第56-65页 |
| 3.6.2 Cy-S-S的生物测试实验结果 | 第65-67页 |
| 3.7 本章小结 | 第67-68页 |
| 第四章 总结与展望 | 第68-69页 |
| 附录一 NRP-1的相关图谱 | 第69-72页 |
| 附录二 Cy-S-S的相关图谱 | 第72-76页 |
| 参考文献 | 第76-83页 |
| 攻读硕士研究生期间论文发表情况 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
