摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6页 |
主要缩略词表 | 第10-12页 |
第一章 前言 | 第12-15页 |
第二章 OXA含量及脂质体包封率测定方法的构建 | 第15-24页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第15-16页 |
2.1.1 主要药品 | 第15页 |
2.1.2 主要仪器及耗材 | 第15-16页 |
2.2 实验方法 | 第16-18页 |
2.2.1 OXA含量检测方法 | 第16-17页 |
2.2.2 载药脂质体包封率测定方法的考察及构建 | 第17-18页 |
2.2.3 数据处理和统计学分析 | 第18页 |
2.3 实验结果 | 第18-22页 |
2.3.1 OXA检测波长的选择 | 第18-19页 |
2.3.2 色谱条件 | 第19页 |
2.3.3 专属性的考察 | 第19-20页 |
2.3.4 线性关系的考察 | 第20页 |
2.3.5 精密度实验 | 第20页 |
2.3.6 微柱制备检测结果 | 第20-22页 |
2.3.7 LPP-OXA包封率检测 | 第22页 |
2.4 讨论 | 第22-24页 |
第三章 OXA脂质体的制备方法研究 | 第24-27页 |
3.1 实验材料和仪器 | 第24页 |
3.1.1 主要药品及试剂 | 第24页 |
3.1.2 主要耗材及仪器 | 第24页 |
3.2 实验方法 | 第24-25页 |
3.2.1 薄膜分散法制备LPP-OXA | 第24-25页 |
3.2.2 逆向蒸发法制备LPP-OXA | 第25页 |
3.2.3 逆向蒸发法结合冻融法制备LPP-OXA | 第25页 |
3.2.4 数据处理和统计学分析 | 第25页 |
3.3 结果 | 第25页 |
3.4 讨论 | 第25-27页 |
第四章 Sev偶联OXA脂质体的最终构建及评价 | 第27-40页 |
4.1 实验材料与仪器 | 第27-29页 |
4.1.1 主要药品及试剂 | 第27页 |
4.1.2 主要耗材及仪器 | 第27-28页 |
4.1.3 主要试剂配制 | 第28-29页 |
4.2 实验方法 | 第29-35页 |
4.2.1 逆向蒸发结合冻融法制备LPP-OXA | 第29页 |
4.2.2 Sev偶联OXA脂质体的制备(简称Sev-LPP-OXA) | 第29-30页 |
4.2.3 超滤离心法分离未偶联的Sev以及游离的OXA | 第30页 |
4.2.4 Sev-LPP-OXA的表征 | 第30-34页 |
4.2.5 数据处理和统计学分析 | 第34-35页 |
4.3 结果 | 第35-39页 |
4.3.1 外观 | 第35页 |
4.3.2 粒径电位测定和形态观察 | 第35-36页 |
4.3.3 免疫脂质体的稳定性 | 第36-37页 |
4.3.4 巯基化抗体含巯基数检测 | 第37页 |
4.3.5 SDS-PAGE非还原性凝胶电泳验证抗体与脂质体的偶联 | 第37-38页 |
4.3.6 BCA法检测抗体偶联率 | 第38页 |
4.3.7 ELISA法检测偶联到免疫脂质体上的Sev单抗结合活性 | 第38页 |
4.3.8 药物体外释放实验 | 第38-39页 |
4.4 讨论 | 第39-40页 |
第五章 Sev-LPP-OXA对HCC细胞靶向性及细胞毒性的初步研究 | 第40-50页 |
5.1 实验材料与仪器 | 第40-41页 |
5.1.1 细胞株 | 第40页 |
5.1.2 主要试剂 | 第40页 |
5.1.3 主要仪器 | 第40-41页 |
5.1.4 试剂配制 | 第41页 |
5.2 实验方法 | 第41-45页 |
5.2.1 细胞培养 | 第41-42页 |
5.2.2 脂质体制备 | 第42-43页 |
5.2.3 MTT法检测细胞增殖抑制率 | 第43-44页 |
5.2.4 激光共聚焦显微镜观察人HCC细胞对免疫脂质体的摄取 | 第44页 |
5.2.5 数据处理和统计学分析 | 第44-45页 |
5.3 实验结果 | 第45-48页 |
5.3.1 细胞毒性结果 | 第45-46页 |
5.3.2 靶向性实验结果 | 第46-48页 |
5.4 讨论 | 第48-50页 |
第六章 总结与展望 | 第50-51页 |
6.1 总结 | 第50页 |
6.2 不足与展望 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-55页 |
文献综述 主动靶向脂质体及靶向性实验的研究进展 | 第55-66页 |
参考文献 | 第61-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
个人简介 | 第67-68页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第68页 |