| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-14页 |
| 1.1 焦虑心境的表现、风险因子和发展 | 第10-11页 |
| 1.2 Rap1蛋白的功能 | 第11-12页 |
| 1.3 慢性应激是引发焦虑心境的重要社会因素 | 第12-13页 |
| 1.4 本研究的思路 | 第13-14页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第14-29页 |
| 2.1 实验动物 | 第14-15页 |
| 2.1.1 转基因动物的构建 | 第14页 |
| 2.1.2 实验动物的饲养 | 第14-15页 |
| 2.2 实验仪器、药品、试剂及溶液的配制 | 第15-19页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第15-16页 |
| 2.2.2 实验药品 | 第16页 |
| 2.2.3 实验试剂 | 第16-17页 |
| 2.2.4 实验相关溶液的配制 | 第17-19页 |
| 2.3 实验过程及方法 | 第19-29页 |
| 2.3.1 基因型鉴定 | 第19-21页 |
| 2.3.2 旷场测试(openfieldtest) | 第21-22页 |
| 2.3.3 小脑和海马区组织的分离 | 第22页 |
| 2.3.4 组织总蛋白的提取 | 第22-23页 |
| 2.3.5 组织膜蛋白的提取 | 第23页 |
| 2.3.6 蛋白浓度的测定：BCA法 | 第23-24页 |
| 2.3.7 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第24-26页 |
| 2.3.8 蛋白免疫印迹 | 第26-27页 |
| 2.3.9 GSTPull-DownAssay与Rap1活性检测技术 | 第27页 |
| 2.3.10 动物模型的建立 | 第27-28页 |
| 2.3.11 电生理实验 | 第28-29页 |
| 第3章 实验结果 | 第29-41页 |
| 3.1 通过Cre-loxP技术获得前脑限制性敲除Rap1基因敲除小鼠 | 第29-30页 |
| 3.2 Rap1敲除显著降低小鼠焦虑样行为 | 第30-31页 |
| 3.3 Rap1敲除不影响海马区AMPA受体和NMDA受体亚基的总蛋白表达 | 第31-32页 |
| 3.4 Rap1敲除显著增加AMPA受体和NMDA受体亚基膜蛋白表达水平 | 第32-33页 |
| 3.5 Rap1敲除增加海马CA1区神经元的mEPSC幅度而对其频率无显著影响 | 第33-34页 |
| 3.6 慢性束缚应激显著增强小鼠的焦虑样行为 | 第34-35页 |
| 3.7 慢性束缚应激不影响小鼠海马Rap1蛋白表达 | 第35-36页 |
| 3.8 慢性束缚应激显著激活小鼠海马区而非小脑区的Rap1蛋白 | 第36-37页 |
| 3.9 慢性束缚应激降低小鼠海马区AMPA和NMDA受体亚基的表达 | 第37-38页 |
| 3.10 慢性束缚应激显著降低小鼠海马AMPA受体和NMDA受体亚基膜表达 | 第38-39页 |
| 3.11 慢性束缚应激降低海马区CA1神经元mEPSC的幅度和频率 | 第39-41页 |
| 第4章 讨论 | 第41-43页 |
| 第5章 结论 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-47页 |
