| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-24页 |
| 1.1 包虫病的研究进展 | 第10-11页 |
| 1.1.1 包虫病的流行状况 | 第10页 |
| 1.1.2 包虫病的防治状况 | 第10-11页 |
| 1.1.3 包虫病与机体免疫关系 | 第11页 |
| 1.2 DC在寄生虫领域的研究 | 第11-14页 |
| 1.2.1 DC的简介 | 第11-13页 |
| 1.2.2 寄生虫抗原对与DC影响 | 第13-14页 |
| 1.3 Notch信号通路的研究进展 | 第14-22页 |
| 1.3.1 Notch信号通路的简介 | 第14-16页 |
| 1.3.2 Notch信号通路对多种细胞的发育及功能的调控 | 第16-21页 |
| 1.3.3 Notch信号通路在疾病中的研究 | 第21-22页 |
| 1.4 本论文研究的目的和意义 | 第22-24页 |
| 第二章 细粒棘球绦虫重组抗原对DC发育及功能的影响 | 第24-54页 |
| 2.1 实验材料和主要仪器 | 第24-27页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.2 主要试剂及耗材 | 第25-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-34页 |
| 2.2.1 抗原的获取 | 第27-30页 |
| 2.2.2 抗原体外刺激小鼠骨髓树突状细胞 | 第30-31页 |
| 2.2.3 形态学的观察 | 第31页 |
| 2.2.4 透射电镜的观察 | 第31-32页 |
| 2.2.5 扫描电镜的观察 | 第32页 |
| 2.2.6 吞噬能力测定 | 第32页 |
| 2.2.7 DC细胞表面分子水平的检测 | 第32-33页 |
| 2.2.8 同种异体混合淋巴细胞反应 | 第33-34页 |
| 2.2.9 酶联免疫吸附试验ELISA | 第34页 |
| 2.2.10 DC迁移能力的检测 | 第34页 |
| 2.2.11 统计学分析 | 第34页 |
| 2.3 结果 | 第34-49页 |
| 2.3.1 重组蛋白的纯化及复性 | 第34-35页 |
| 2.3.2 蛋白内毒素含量的测定 | 第35-36页 |
| 2.3.3 小鼠骨髓树突细胞的体外培养 | 第36-49页 |
| 2.4 讨论 | 第49-54页 |
| 第三章 Notch信号通路在DC介导的细粒棘球蚴感染免疫中的作用 | 第54-73页 |
| 3.1 实验材料和主要仪器 | 第54-56页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第54页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第54-55页 |
| 3.1.3 试剂及配方 | 第55-56页 |
| 3.2 方法 | 第56-60页 |
| 3.2.1 骨髓来源DC的体外培养 | 第56页 |
| 3.2.2 DAPT处理DC的不同浓度及时间的摸索 | 第56页 |
| 3.2.3 RT-PCR | 第56-58页 |
| 3.2.4 实时荧光定量PCR | 第58页 |
| 3.2.5 γ-分泌酶抑制剂DAPT处理DC | 第58页 |
| 3.2.6 Jagged 1处理DC | 第58-59页 |
| 3.2.7 扫描电镜 | 第59页 |
| 3.2.8 流式细胞术检测DC表面分子 | 第59页 |
| 3.2.9 DC迁移能力的检测 | 第59页 |
| 3.2.10 统计学分析 | 第59-60页 |
| 3.3 结果 | 第60-69页 |
| 3.3.1 DAPT对DC的处理 | 第60-67页 |
| 3.3.2 Jagged 1处理DC | 第67-69页 |
| 3.4 讨论 | 第69-73页 |
| 第四章 结论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-88页 |
| 缩略词表 | 第88-90页 |
| 在学期间的研究成果 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91页 |
