| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| List of Abbreviations | 第12-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-76页 |
| 1.1 光动力治疗 | 第13-21页 |
| 1.1.1 光动力治疗简介 | 第14-18页 |
| 1.1.2 可控光敏纳米体系 | 第18-21页 |
| 1.2 光响应基因递送体系 | 第21-39页 |
| 1.2.1 偶氮苯类 | 第21-24页 |
| 1.2.2 邻硝基苄基类 | 第24-26页 |
| 1.2.3 螺吡喃类 | 第26-27页 |
| 1.2.4 光化学转染 | 第27-37页 |
| 1.2.4.1 PCI介导的基因递送 | 第27-29页 |
| 1.2.4.2 PCI过程对核酸的潜在危害及其改善 | 第29-37页 |
| 1.2.5 碳纳米管 | 第37-38页 |
| 1.2.6 金纳米粒子 | 第38-39页 |
| 1.3 螺吡喃光响应开关的应用 | 第39-53页 |
| 1.3.1 界面性质调控 | 第39-42页 |
| 1.3.2 药物递送载体 | 第42-43页 |
| 1.3.3 荧光成像 | 第43-47页 |
| 1.3.4 离子检测 | 第47-49页 |
| 1.3.5 力致变色 | 第49-53页 |
| 1.4 聚噻吩在生物医用领域的应用 | 第53-58页 |
| 1.4.1 细胞荧光成像 | 第53-54页 |
| 1.4.2 生物检测 | 第54-57页 |
| 1.4.3 基因输送 | 第57-58页 |
| 1.5 论文立题依据 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-76页 |
| 第二章 含螺吡喃的光活性纳米粒子的构建及其活性氧可逆性调控 | 第76-120页 |
| 2.1 引言 | 第76-78页 |
| 2.2 实验与方法 | 第78-90页 |
| 2.2.1 实验仪器与试剂 | 第78-79页 |
| 2.2.1.1 实验仪器 | 第78页 |
| 2.2.1.2 实验试剂 | 第78-79页 |
| 2.2.2 含螺吡喃水溶性阳离子聚合物的合成 | 第79-84页 |
| 2.2.2.1 含螺吡喃阳离子聚合物P1-P3的合成路线 | 第79页 |
| 2.2.2.2 含螺吡喃单体(SPMA)的合成 | 第79-81页 |
| 2.2.2.3 Boc基团保护甲基丙烯组胺酰胺(Boc-HMA)的合成 | 第81-83页 |
| 2.2.2.4 含螺吡喃水溶性阳离子聚合物P1-P3的合成 | 第83-84页 |
| 2.2.3 光活性纳米复合物粒子的制备及性能表征 | 第84-90页 |
| 2.2.3.1 光活性纳米粒子的制备 | 第84-85页 |
| 2.2.3.2 原子力显微镜形貌表征 | 第85页 |
| 2.2.3.3 透射电子显微镜形貌表征 | 第85-86页 |
| 2.2.3.4 粒径及(?)电势表征 | 第86-87页 |
| 2.2.3.5 光响应动力学性质 | 第87页 |
| 2.2.3.6 荧光量子产率测试 | 第87-88页 |
| 2.2.3.7 单线态氧量子产率测试 | 第88页 |
| 2.2.3.8 光热性质测试 | 第88页 |
| 2.2.3.9 激光共聚焦细胞成像 | 第88-89页 |
| 2.2.3.10 细胞内活性氧水平测试 | 第89页 |
| 2.2.3.11 细胞活性测试 | 第89-90页 |
| 2.2.3.12 流式细胞技术测试 | 第90页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第90-114页 |
| 2.3.1 含螺吡喃水溶性阳离子聚合物P1-P3的表征 | 第90-93页 |
| 2.3.2 光活性纳米复合物粒子的制备及性能表征 | 第93-114页 |
| 2.3.2.1 结构表征 | 第93-97页 |
| 2.3.2.2 光切换过程中的稳定性表征 | 第97-99页 |
| 2.3.2.3 光响应动力学性质表征 | 第99-103页 |
| 2.3.2.4 荧光量子产率测试 | 第103-104页 |
| 2.3.2.5 单线态氧量子产率测试 | 第104-105页 |
| 2.3.2.6 激光共聚焦细胞成像 | 第105-110页 |
| 2.3.2.7 细胞内活性氧的产生及诱导细胞凋亡 | 第110-114页 |
| 2.4 本章小结 | 第114-115页 |
| 参考文献 | 第115-120页 |
| 第三章 含螺吡喃的高分子光敏剂增强聚乙烯亚胺介导的基因递送 | 第120-160页 |
| 3.1 引言 | 第120-123页 |
| 3.2 实验与方法 | 第123-129页 |
| 3.2.1 实验仪器与试剂 | 第123-124页 |
| 3.2.1.1 实验仪器 | 第123页 |
| 3.2.1.2 实验试剂 | 第123-124页 |
| 3.2.2 PCI效应增强基因递送的性能表征 | 第124-129页 |
| 3.2.2.1 三元纳米复合物的制备 | 第124页 |
| 3.2.2.2 粒径及(?)电势表征 | 第124页 |
| 3.2.2.3 透射电子显微镜形貌表征 | 第124-125页 |
| 3.2.2.4 DNA稳定性测试 | 第125-126页 |
| 3.2.2.5 细胞内活性氧水平测试 | 第126页 |
| 3.2.2.6 细胞活性测试 | 第126-127页 |
| 3.2.2.7 PCI介导细胞转染 | 第127页 |
| 3.2.2.8 激光共聚焦成像表征PCI增强细胞转染 | 第127-128页 |
| 3.2.2.9 激光共聚焦成像表征溶酶体逃逸 | 第128-129页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第129-153页 |
| 3.3.1 三元纳米复合物的制备及表征 | 第129-130页 |
| 3.3.1.1 三元纳米复合物的制备 | 第129页 |
| 3.3.1.2 粒径与形貌表征 | 第129-130页 |
| 3.3.2 PCI介导增强基因递送性能表征 | 第130-153页 |
| 3.3.2.1 光敏化过程中DNA稳定性测试 | 第130-138页 |
| 3.3.2.2 细胞内活性氧水平测试 | 第138-140页 |
| 3.3.2.3 细胞活性测试 | 第140-141页 |
| 3.3.2.4 PCI介导细胞转染 | 第141-146页 |
| 3.3.2.5 激光共聚焦表征PCI增强细胞转染 | 第146-149页 |
| 3.3.2.6 激光共聚焦表征溶酶体逃逸 | 第149-153页 |
| 3.4 本章小结 | 第153-154页 |
| 参考文献 | 第154-160页 |
| 第四章 立构规整型聚噻吩增强基因递送 | 第160-174页 |
| 4.1 引言 | 第160-161页 |
| 4.2 实验与方法 | 第161-163页 |
| 4.2.1 实验仪器与试剂 | 第161页 |
| 4.2.1.1 实验仪器 | 第161页 |
| 4.2.1.2 实验试剂 | 第161页 |
| 4.2.2 聚噻吩与DNA的相互作用及增强基因递送的性能表征 | 第161-163页 |
| 4.2.2.1 溴化乙锭排除测试 | 第161-162页 |
| 4.2.2.2 复合物纳米粒子的制备 | 第162页 |
| 4.2.2.3 凝胶电泳测试 | 第162-163页 |
| 4.2.2.4 粒径及(?)电势测试 | 第163页 |
| 4.2.2.5 原子力显微镜形貌表征 | 第163页 |
| 4.2.2.6 细胞内活性氧水平测试 | 第163页 |
| 4.2.2.7 细胞活性测试 | 第163页 |
| 4.2.2.8 细胞转染测试 | 第163页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第163-171页 |
| 4.3.1 立构规整型的阳离子聚噻吩与DNA的相互作用 | 第163-166页 |
| 4.3.2 复合物纳米粒子增强基因递送的性能表征 | 第166-171页 |
| 4.3.2.1 复合物纳米粒子的形貌表征 | 第166-167页 |
| 4.3.2.2 细胞内活性氧水平测试 | 第167-168页 |
| 4.3.2.3 PCI处理对DNA稳定性的影响 | 第168-169页 |
| 4.3.2.4 PCI处理对复合物毒性的影响 | 第169页 |
| 4.3.2.5 PCI介导细胞转染增强 | 第169-171页 |
| 4.4 本章小结 | 第171页 |
| 参考文献 | 第171-174页 |
| 第五章 总结与展望 | 第174-177页 |
| 博士期间已发表和待发表论文 | 第177-178页 |
| 致谢 | 第178-179页 |
