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玉米光周期敏感ZmCCT与逆境胁迫基因互作关系分析

致谢第4-7页
摘要第7-9页
1 文献综述第9-23页
    1.1 粮食生产现状第9-10页
        1.1.1 作物生产现状第9-10页
        1.1.2 玉米生产现状第10页
    1.2 玉米的起源第10-12页
    1.3 植物光周期现象及其分子机制研究进展第12-16页
        1.3.1 光周期现象第12页
        1.3.2 光周期与光周期敏感概念的提出第12页
        1.3.3 植物光周期现象的研究第12-13页
        1.3.4 光周期途径第13-14页
        1.3.5 光受体第14页
        1.3.6 玉米光周期现象第14-15页
        1.3.7 玉米光周期的分子机制第15-16页
    1.4 植物抗逆性研究第16-19页
        1.4.1 干旱和高温第16-18页
        1.4.2 茎腐病第18-19页
    1.5 光周期和抗逆性的转录组相关研究第19-20页
    1.6 RNA-seq技术第20-23页
        1.6.1 测序技术介绍第20-21页
        1.6.2 RNA-seq在转录组测序中的优势第21-23页
2 引言第23-24页
3 材料和方法第24-32页
    3.1 实验材料第24页
    3.2 胁迫处理及测定第24-25页
        3.2.1 种子处理和溶液培养及胁迫处理第24页
        3.2.2 水分含量分析第24-25页
        3.2.3 黄早4和H496种植、茎腐病病菌接种方法及病情调查第25页
    3.3 样品及RNA-seq第25-31页
        3.3.1 材料种植、取样及样品贮藏第25-26页
        3.3.2 黄早4和H496RNA提取和cDNA第一条链的合成检测第26-27页
        3.3.3 转录组测序及数据分析分析第27-28页
        3.3.4 转录组数据处理以及生物信息学分析第28-31页
        3.3.5 共表达网络构建第31页
    3.4 启动子元件分析试验第31页
    3.5 qRT-PCR分析第31-32页
4 结果分析第32-45页
    4.1 材料表型及抗性鉴定第32-34页
        4.1.1 表型鉴定第32页
        4.1.2 黄早4和近等基因系H496响应生物与非生物胁迫第32-34页
    4.2 总RNA质量检测第34页
    4.3 转录组数据分析第34-43页
        4.3.1 黄早4和H496茎尖样品转录组测序的Reads分析第34-35页
        4.3.2 基因特异表达分析第35页
        4.3.3 基因差异表达分析第35-36页
        4.3.4 差异表达基因趋势分析第36-37页
        4.3.5 三个阶段特异表达的差异基因分析第37-38页
        4.3.6 GO功能富集分析第38-40页
        4.3.7 差异基因功能及网络分析第40-41页
        4.3.8 差异表达基因中与光周期相关基因的分析第41-42页
        4.3.9 差异表达基因共表达网络分析第42页
        4.3.10 qRT-PCR验证第42-43页
    4.4 启动子元件分析第43-45页
5 结论第45-46页
6 讨论第46-49页
    6.1 长日照条件下ZmCCT基因可能介导其它光周期相关基因表达第46页
    6.2 ZmCCT基因可能是连接光周期与逆境响应的关键节点第46-47页
    6.3 光周期和抗逆基因的共表达网络调节第47-49页
参考文献第49-60页
附录第60-66页
Abstract第66-67页

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