| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第1章 文献综述 | 第9-21页 |
| 1.1 花青素苷生物合成研究进展 | 第9-12页 |
| 1.1.1 花青素苷的特点及作用 | 第9页 |
| 1.1.2 花青素苷的生物合成 | 第9-10页 |
| 1.1.3 花青素苷生物合成途径转录水平的调控 | 第10-12页 |
| 1.1.4 利用转录因子改变植物颜色 | 第12页 |
| 1.2 AtPAP1基因与玉米Lc基因及其对花青素生物合成调控功能的研究 | 第12-15页 |
| 1.2.1 AtPAP1基因对花青素苷合成的调控 | 第12-13页 |
| 1.2.2 玉米Lc基因对花青素苷生物合成的调控 | 第13-14页 |
| 1.2.3 AtPAP1基因与玉米Lc基因协同表达对花青素苷生物合成的影响 | 第14-15页 |
| 1.3 植物遗传转化的研究进展 | 第15-21页 |
| 1.3.1 根癌农杆菌介导转化的基本原理 | 第15页 |
| 1.3.2 酚类物质对Vir基因的活化 | 第15-16页 |
| 1.3.3 植物材料微创伤处理 | 第16-17页 |
| 1.3.4 表面活性剂 | 第17-18页 |
| 1.3.5 PH对转化率的影响 | 第18页 |
| 1.3.6 共培养温度对转化的影响 | 第18-19页 |
| 1.3.7 干燥处理 | 第19页 |
| 1.3.8 磁性纳米颗粒 | 第19-21页 |
| 第2章 引言 | 第21-23页 |
| 2.1 研究意义与内容 | 第21-22页 |
| 2.2 研究技术路线 | 第22-23页 |
| 第3章 彩叶芋‘红桃K’遗传转化体系的优化 | 第23-39页 |
| 3.1 试验材料 | 第23-24页 |
| 3.1.1 菌种及植物材料 | 第23页 |
| 3.1.2 试验药品及溶液配制 | 第23页 |
| 3.1.3 培养基的配制 | 第23-24页 |
| 3.1.4 主要仪器与设备 | 第24页 |
| 3.2 试验方法 | 第24-27页 |
| 3.2.1 潮霉素的敏感性试验 | 第24页 |
| 3.2.2 羧苄青霉素的耐受性试验 | 第24页 |
| 3.2.3 农杆菌菌液的制备 | 第24-26页 |
| 3.2.4 外植体的选择 | 第26页 |
| 3.2.5 农杆菌介导彩叶芋遗传转化 | 第26-27页 |
| 3.3 试验结果 | 第27-35页 |
| 3.3.1 潮霉素浓度的确定 | 第27-28页 |
| 3.3.2 羧苄青霉素浓度的确定 | 第28-30页 |
| 3.3.3 预培养时间对转化的影响 | 第30-31页 |
| 3.3.4 侵染时间对转化的影响 | 第31页 |
| 3.3.5 共培养时间对转化的影响 | 第31-33页 |
| 3.3.6 乙酰丁香酮对转化的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.7 负压对转化的影响 | 第34-35页 |
| 3.4 讨论 | 第35-39页 |
| 3.4.1 转化受体 | 第35页 |
| 3.4.2 侵染时间 | 第35-36页 |
| 3.4.3 乙酰丁香酮 | 第36-37页 |
| 3.4.4 负压法 | 第37-39页 |
| 第4章 转AtPAP1基因与玉米Lc基因的彩叶芋新材料获得 | 第39-47页 |
| 4.1 试验材料 | 第39-40页 |
| 4.1.1 菌种及植物材料 | 第39页 |
| 4.1.2 试验药品及溶液配制 | 第39页 |
| 4.1.3 培养基的配制 | 第39页 |
| 4.1.4 主要仪器与设备 | 第39-40页 |
| 4.2 试验方法 | 第40-41页 |
| 4.2.1 外植体的选择及预培养 | 第40页 |
| 4.2.2 农杆菌侵染液的制备 | 第40页 |
| 4.2.3 彩叶芋遗传转化 | 第40页 |
| 4.2.4 转化材料的鉴定 | 第40-41页 |
| 4.3 试验结果 | 第41-44页 |
| 4.3.1 pC1300-PAP1+Lc载体在彩叶芋中的遗传转化与转化材料的分子鉴定 | 第41-43页 |
| 4.3.2 转基因植株表型观察 | 第43-44页 |
| 4.4 讨论 | 第44-47页 |
| 第5章 总结 | 第47-49页 |
| 5.1 主要结果 | 第47-48页 |
| 5.1.1 彩叶芋‘红桃K’遗传转化体系的优化 | 第47-48页 |
| 5.1.2 获得转AtPAP1基因与玉米Lc基因的彩叶芋新材料 | 第48页 |
| 5.2 下一步计划 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-61页 |
| 缩略词表 | 第61-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
