两种供磷水平下玉米苗期根系性状的QTL定位分析
摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
1 文献综述 | 第11-22页 |
1.1 研究背景 | 第11-12页 |
1.2 玉米根系特点及作用 | 第12-14页 |
1.2.1 根系的支持固定作用与倒伏性 | 第12页 |
1.2.2 根系的吸收作用 | 第12页 |
1.2.3 根系的合成作用 | 第12-13页 |
1.2.4 前人对根系的研究 | 第13-14页 |
1.3 磷元素的重要性 | 第14-17页 |
1.3.1 磷元素在植物体内的含量和分布 | 第14页 |
1.3.2 研究玉米耐低磷种质资源的价值 | 第14-15页 |
1.3.3 玉米耐低磷种质资源的研究情况 | 第15-16页 |
1.3.4 低磷胁迫对玉米根系形态和根构型的影响 | 第16-17页 |
1.4 QTL定位 | 第17-21页 |
1.4.1 分子标记 | 第18页 |
1.4.2 连锁图谱的构建 | 第18-19页 |
1.4.3 QTL定位的分析方法 | 第19-20页 |
1.4.4 QTL定位与分子标记辅助选择 | 第20页 |
1.4.5 QTL精细定位与图位克隆 | 第20-21页 |
1.4.6 QTL定位存在的问题 | 第21页 |
1.5 玉米磷素吸收利用相关性状的QTL定位进展 | 第21-22页 |
2 实验材料与方法 | 第22-29页 |
2.1 实验材料 | 第22页 |
2.2 沙培实验 | 第22-25页 |
2.2.1 盆栽沙培进行的气候条件 | 第22页 |
2.2.2 盆栽沙培进行的营养条件 | 第22页 |
2.2.3 苗期的管理与低磷胁迫处理方法 | 第22-23页 |
2.2.4 QTL表型数据的收集 | 第23-25页 |
2.3 群体DNA的提取 | 第25页 |
2.3.1 群体DNA的提取步骤 | 第25页 |
2.3.2 DNA浓度与纯度检测 | 第25页 |
2.4 多态性SSR标记的筛选和群体检测 | 第25-28页 |
2.4.1 PCR扩增 | 第26页 |
2.4.2 聚丙烯酰胺凝胶电泳检测 | 第26-27页 |
2.4.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳的银染 | 第27-28页 |
2.4.4 SSR标记基因型分离情况的统计 | 第28页 |
2.5 分子遗传连锁图谱的构建 | 第28页 |
2.6 QTL定位 | 第28-29页 |
3 结果与分析 | 第29-46页 |
3.1 RIL群体的表型性状遗传分析 | 第29-35页 |
3.2 RIL群体根系性状及干重等性状的相关分析 | 第35-36页 |
3.3 RIL群体基因型组成 | 第36-39页 |
3.4 RIL群体遗传连锁图谱的构建 | 第39-41页 |
3.6 两种磷水平下的QTL定位及效应分析 | 第41-46页 |
3.6.1 总根长 | 第41-42页 |
3.6.2 根表面积 | 第42-43页 |
3.6.3 平均直径 | 第43页 |
3.6.4 根体积 | 第43页 |
3.6.5 根尖数 | 第43页 |
3.6.6 直径小于0.5mm的根长度 | 第43-44页 |
3.6.7 直径小于0.5mm的根表面积 | 第44页 |
3.6.8 直径小于0.5mm的根系体积 | 第44页 |
3.6.9 直径小于0.5mm的根尖数 | 第44页 |
3.6.10 叶干重 | 第44页 |
3.6.11 根干重 | 第44-45页 |
3.6.12 根冠比 | 第45页 |
3.6.13 最长根长 | 第45页 |
3.6.14 苗期叶长 | 第45页 |
3.6.15 苗期叶宽 | 第45-46页 |
3.6.16 苗期叶片数 | 第46页 |
4 讨论 | 第46-50页 |
4.1 根系性状遗传力及相关性分析 | 第46-47页 |
4.2 玉米根系QTL定位的研究方法 | 第47-48页 |
4.3 正常磷水平条件下的QTL定位 | 第48-49页 |
4.4 低磷胁迫下的QTL定位 | 第49页 |
4.5 两种磷条件下定位QTL的异同 | 第49-50页 |
5 结论 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-57页 |
致谢 | 第57-58页 |
附录 | 第58页 |