| 中文摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 前言 | 第8-10页 |
| 实验材料与方法 | 第10-25页 |
| 1.实验动物 | 第10页 |
| 2.实验仪器 | 第10-11页 |
| 3.实验试剂 | 第11-12页 |
| 4.实验方法 | 第12-25页 |
| 4.1 溶液配制 | 第12-14页 |
| 4.2 细胞培养 | 第14-15页 |
| 4.3 NO含量检测 | 第15页 |
| 4.4 细胞活性测定(MTT) | 第15-16页 |
| 4.5 酶联免疫吸附测定(ELISA) | 第16页 |
| 4.6 实时荧光定量PCR(Real-timeQuantitativePCRDetectingSystem) | 第16-18页 |
| 4.7 蛋白免疫印迹(Westernblots) | 第18-20页 |
| 4.8 质粒抽提步骤 | 第20页 |
| 4.9 转染SiRNA步骤 | 第20页 |
| 4.10 转染质粒步骤 | 第20-21页 |
| 4.11 免疫共沉淀(IP) | 第21页 |
| 4.12 NF-κB荧光素酶报告基因的检测 | 第21页 |
| 4.13 建立小鼠MPTP模型 | 第21-22页 |
| 4.14 爬杆实验 | 第22页 |
| 4.15 转棒实验 | 第22页 |
| 4.16 脑片的制备 | 第22页 |
| 4.17 免疫荧光染色 | 第22-23页 |
| 4.18 ADP/ATP比值测定 | 第23页 |
| 4.19 NAD~+/NADH比值测定 | 第23页 |
| 4.20 ECAR和OCR测定 | 第23-24页 |
| 4.21 小胶质细胞条件培养基/神经元共培养 | 第24页 |
| 4.22 细胞凋亡测定 | 第24页 |
| 4.23 实验数据处理和统计学方法 | 第24-25页 |
| 实验结果 | 第25-41页 |
| 1.LPS诱导BV-2小胶质细胞有氧糖酵解 | 第25-26页 |
| 2.糖酵解抑制阻断LPS诱导的小胶质细胞一氧化氮(NitricOxide)的产生 | 第26-28页 |
| 3.糖酵解抑制阻断LPS诱导的小胶质细胞促炎因子的表达 | 第28-30页 |
| 4.敲减糖酵解途径关键酶表达抑制LPS诱导的BV-2小胶质细胞炎症反应 | 第30-31页 |
| 5.糖酵解抑制阻断LPS诱导的NF-κB通路的激活 | 第31-33页 |
| 6.糖酵解抑制阻断AMPK/mTOR信号通路介导的IKKa/b的磷酸化 | 第33-34页 |
| 7.2-DG抑制LPS诱导的NF-κBp65亚单位的乙酰化 | 第34-35页 |
| 8.糖酵解抑制改善BV-2小胶质细胞条件培养基诱导的HT-22神经元损伤 | 第35-37页 |
| 9.2-DG改善MPTP诱导的行为学异常 | 第37页 |
| 10.2-DG改善MPTP诱导的黑质部位DA神经元损伤以及小胶质细胞激活 | 第37-41页 |
| 讨论 | 第41-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 综述 | 第52-62页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第62-63页 |
| 缩略词表 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
