摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-7页 |
第1章 前言 | 第11-13页 |
第2章 材料与方法 | 第13-34页 |
2.1 材料与试剂 | 第13-17页 |
2.1.1 材料 | 第13页 |
2.1.2 主要试剂 | 第13-17页 |
2.2 方法 | 第17-34页 |
2.2.1 细胞复苏 | 第17页 |
2.2.2 细胞培养 | 第17-18页 |
2.2.3 细胞的冻存 | 第18页 |
2.2.4 化疗药物的稀释与保存 | 第18页 |
2.2.5 实时荧光定量聚合酶链锁反应 | 第18-20页 |
2.2.6 96孔板细胞培养及Cell Counting Kit/WST-8 (CCK8)细胞活性检测 | 第20-22页 |
2.2.7 流式细胞学细胞周期检测实验 | 第22-23页 |
2.2.8 染色质免疫共沉淀技术 | 第23-29页 |
2.2.9 荧光素酶报告基因系统 | 第29-32页 |
2.2.10 基因集富集分析 | 第32-33页 |
2.2.11 统计分析 | 第33-34页 |
第3章 结果 | 第34-55页 |
3.1 瘦素的基本信息 | 第34-38页 |
3.1.1 瘦素的基本结构和功能 | 第34-35页 |
3.1.2 数据库(Oncomine Main)中瘦素的表达情况分析 | 第35-36页 |
3.1.3 使用cBioPortal网站分析卵巢癌病人中瘦素的基因突变情况和蛋白水平与预后之间的关系 | 第36-38页 |
3.2 铂类联合紫杉醇/多烯紫杉醇治疗的卵巢癌患者中高表达瘦素者总体生存率显著低于低表达瘦素者 | 第38-40页 |
3.3 数据库分析显示不同临床分期,病理分级的卵巢癌患者总体生存率与瘦素表达量没有显著相关性 | 第40-43页 |
3.4 瘦素重组蛋白在细胞水平增强了卵巢癌细胞对紫杉醇类化疗药物的抵抗作用 | 第43-46页 |
3.5 瘦素能够降低紫杉醇类化疗药(紫杉醇/多烯紫杉醇)作用下卵巢癌细胞停滞在G2/M期的细胞比例 | 第46-48页 |
3.6 转录因子C/EBP α与瘦素上游启动子区域结合启动瘦素对卵巢癌细胞的调控作用 | 第48-50页 |
3.7 GSEA法分析显示高表达瘦素者在肿瘤标志性效应特征基因集和KEGG的基因集中有明显的富集现象 | 第50-55页 |
第4章 讨论 | 第55-58页 |
第5章 综述 | 第58-71页 |
5.1 瘦素的基础结构及来源 | 第59页 |
5.2 瘦素的基本功能 | 第59-60页 |
5.3 瘦素与其他疾病 | 第60页 |
5.4 瘦素与肿瘤 | 第60-63页 |
5.4.1 瘦素与前列腺癌 | 第61页 |
5.4.2 瘦素与乳腺癌 | 第61-62页 |
5.4.3 瘦素与子宫内膜癌 | 第62页 |
5.4.4 瘦素与卵巢癌 | 第62-63页 |
5.5 结语及展望 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-71页 |
附录 | 第71页 |
中英文缩写对照表 | 第71页 |
攻读学位期间成果 | 第71-72页 |
第6章 致谢 | 第72-74页 |