| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 符号说明 | 第14-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-46页 |
| 1.1 介孔氧化硅及其形貌可控合成 | 第15-26页 |
| 1.1.1介孔材料及其形貌调控 | 第15-18页 |
| 1.1.2 介孔氧化硅合成机理与介孔结构调控 | 第18-20页 |
| 1.1.3 介孔氧化硅的形貌调控 | 第20-26页 |
| 1.2 氧化硅表面功能化 | 第26-38页 |
| 1.2.1 偶联剂 | 第26-28页 |
| 1.2.2 有机高聚物 | 第28-30页 |
| 1.2.3 刺激响应键 | 第30-34页 |
| 1.2.4 超分子纳米阀门 | 第34-35页 |
| 1.2.5 靶向性分子 | 第35-37页 |
| 1.2.6 其他修饰方法 | 第37-38页 |
| 1.3 氧化硅纳米颗粒在基因治疗中的应用 | 第38-44页 |
| 1.3.1 基因治疗 | 第38-39页 |
| 1.3.2 纳米基因载体 | 第39-40页 |
| 1.3.3 纳米氧化硅载体 | 第40-44页 |
| 1.4 本课题的立题意义 | 第44-46页 |
| 第二章 不同形貌和尺寸的氧化硅纳米载体对基因转染效率的影响 | 第46-66页 |
| 2.1 引言 | 第46-47页 |
| 2.2 材料和方法 | 第47-51页 |
| 2.2.1 材料 | 第47页 |
| 2.2.2 不同形貌氧化硅纳米颗粒的制备 | 第47-49页 |
| 2.2.3 氧化硅纳米颗粒表面引入ATRP反应位点 | 第49页 |
| 2.2.4 氧化硅纳米颗粒表面PDMAEMA功能化 | 第49页 |
| 2.2.5 表征实验 | 第49页 |
| 2.2.6 细胞毒性测试 | 第49-51页 |
| 2.2.7 转染测试 | 第51页 |
| 2.2.8 统计分析 | 第51页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第51-65页 |
| 2.3.1 不同形貌氧化硅纳米颗粒的制备与表征 | 第51-55页 |
| 2.3.2 SiO_2-g-PDMAEMA的制备与表征 | 第55-58页 |
| 2.3.3 不同形貌SiO2-g-PDMAEMA络合DNA的能力表征 | 第58-61页 |
| 2.3.4 细胞毒性分析 | 第61-62页 |
| 2.3.5 转染效率评价 | 第62-65页 |
| 2.4 结论 | 第65-66页 |
| 第三章 星形中空氧化硅纳米颗粒构建还原响应性多功能载体 | 第66-89页 |
| 3.1 引言 | 第66-68页 |
| 3.2 材料和方法 | 第68-73页 |
| 3.2.1 材料 | 第68页 |
| 3.2.2 不同形貌空心氧化硅纳米颗粒(HNPs)的制备 | 第68-70页 |
| 3.2.3 HNPs表面修饰 | 第70-71页 |
| 3.2.4 表征实验 | 第71页 |
| 3.2.5 细胞毒性测试 | 第71页 |
| 3.2.6 转染测试 | 第71-72页 |
| 3.2.7 细胞内吞测试 | 第72页 |
| 3.2.8 药物装载和细胞毒性测试 | 第72页 |
| 3.2.9 5-FC/ECD自杀基因系统抗肿瘤效应分析 | 第72-73页 |
| 3.2.10 统计分析 | 第73页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第73-88页 |
| 3.3.1 HNPs的制备与表征 | 第73-74页 |
| 3.3.2 HNPs表面修饰 | 第74-77页 |
| 3.3.3 SiO_2-PGEA络合DNA的能力表征 | 第77-81页 |
| 3.3.4 细胞毒性分析 | 第81页 |
| 3.3.5 转染效率评价 | 第81-84页 |
| 3.3.6 细胞内吞测试 | 第84页 |
| 3.3.7 药物装载、释放及细胞毒性测试 | 第84-88页 |
| 3.3.10 5-FC/ECD自杀基因系统抗肿瘤效应分析 | 第88页 |
| 3.4 结论 | 第88-89页 |
| 第四章 总结与展望 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第101-102页 |
| 导师及作者简介 | 第102-103页 |
| 硕士研究生学位论文答辩委员会决议书 | 第103-104页 |
