| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-41页 |
| 1. 植物与微生物互作的研究综述 | 第12-25页 |
| 1.1 不同物种的常见防御 | 第12-14页 |
| 1.2 微生物攻击的策略 | 第14-15页 |
| 1.3 宿主防御策略 | 第15-16页 |
| 1.4 R基因的作用 | 第16-19页 |
| 1.5 植物的防御信号转导途径 | 第19-22页 |
| 1.6 植物微生物互作中的植物激素信号 | 第22-24页 |
| 1.6.1 植物微生物互作中的茉莉酸信号 | 第22-23页 |
| 1.6.2 防御信号间的交叉对话 | 第23-24页 |
| 1.7 寄主与病原菌共进化的压力 | 第24-25页 |
| 2. SNC1基因在植物抗病中的研究 | 第25-34页 |
| 2.1 snc1抑制因子的筛选 | 第27-28页 |
| 2.2 snc1的修饰基因 | 第28-34页 |
| 2.2.1 核质运输机制 | 第28-29页 |
| 2.2.2 RNA加工蛋白 | 第29-30页 |
| 2.2.3 蛋白修饰酶 | 第30-33页 |
| 2.2.4 SNC1的其他调控途径 | 第33-34页 |
| 3. BON1基因在植物抗病中的研究 | 第34-36页 |
| 3.1 质膜上BON1相关蛋白调控SNC1蛋白 | 第34-36页 |
| 4. 温度对于平衡拟南芥免疫应答和生长的影响 | 第36-40页 |
| 4.1 影响植物适应其生长环境的因素 | 第37-38页 |
| 4.2 snc1-7的表型受到温度调控 | 第38-40页 |
| 4.3 温度调控SA-ET/JA途径的交叉对话 | 第40页 |
| 5. 研究目的 | 第40-41页 |
| 第二章 EMS化学突变拟南芥snc1-1突变体及高温矮化表型突变体的筛选与图位克隆 | 第41-56页 |
| 1. 引言 | 第41-42页 |
| 2. 材料与方法 | 第42-46页 |
| 2.1 植物材料 | 第42-43页 |
| 2.2 主要试剂 | 第43页 |
| 2.3 主要实验器材 | 第43页 |
| 2.4 方法 | 第43-46页 |
| 2.4.1 EMS诱变拟南芥种子 | 第43-44页 |
| 2.4.2 筛选突变体 | 第44页 |
| 2.4.3 突变体遗传分析与图位克隆群体构建 | 第44页 |
| 2.4.4 突变体的初定位与Fine Mapping | 第44-45页 |
| 2.4.5 测序确定突变位点 | 第45页 |
| 2.4.6 引物设计 | 第45-46页 |
| 2.4.7 检测突变体基因型 | 第46页 |
| 3. 结果与分析 | 第46-55页 |
| 3.1 EMS诱变产生int突变体 | 第46-48页 |
| 3.2 int192和int12的遗传特性分析 | 第48-49页 |
| 3.3 图位克隆int192和int12突变 | 第49-51页 |
| 3.4 测序分析int192和int12突变 | 第51-52页 |
| 3.5 突变体功能互补实验 | 第52-53页 |
| 3.6 分离int192和int12单突变体 | 第53-54页 |
| 3.7 snc1-17恢复了int192的表型 | 第54-55页 |
| 4. 讨论 | 第55-56页 |
| 第三章 int192和int12的抗病性检测 | 第56-65页 |
| 1. int192和int12的抗病性实验 | 第56-60页 |
| 1.1 引言 | 第56-57页 |
| 1.2 材料和方法 | 第57-58页 |
| 1.2.1 材料 | 第57页 |
| 1.2.2 供试菌株 | 第57页 |
| 1.2.3 主要试剂 | 第57页 |
| 1.2.4 主要培养基 | 第57-58页 |
| 1.2.5 主要仪器及试材 | 第58页 |
| 1.2.6 试验方法 | 第58页 |
| 1.3 抗病性检测结果与讨论 | 第58-60页 |
| 2. Northern-blot分析int192和int12突变体中PR1基因和SNC1基因表达 | 第60-65页 |
| 2.1 材料和方法 | 第60-63页 |
| 2.1.1 供试材料 | 第60页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第60-61页 |
| 2.1.3 主要器材 | 第61页 |
| 2.1.4 试验方法 | 第61-63页 |
| 2.2 结果 | 第63页 |
| 2.3 讨论 | 第63-65页 |
| 第四章 不同温度下bon1对SNC1核定位的影响 | 第65-72页 |
| 1. 引言 | 第65-66页 |
| 2. 材料与方法 | 第66-69页 |
| 2.1 植物材料 | 第66页 |
| 2.2 菌株及质粒 | 第66页 |
| 2.3 主要试剂及内切酶 | 第66-67页 |
| 2.4 主要培养基 | 第67页 |
| 2.5 主要仪器设备 | 第67页 |
| 2.6 试验方法 | 第67-69页 |
| 2.6.1 大肠杆菌感受态细胞制备 | 第67页 |
| 2.6.2 引物设计 | 第67页 |
| 2.6.3 供试载体 | 第67-68页 |
| 2.6.4 转化 | 第68页 |
| 2.6.5 菌落PCR反应鉴定阳性克隆 | 第68-69页 |
| 2.6.6 质粒提取 | 第69页 |
| 2.6.7 拟南芥原生质体提取与转化 | 第69页 |
| 3. 实验结果 | 第69-71页 |
| 4. 讨论 | 第71-72页 |
| 第五章 int51能够增强SNC1诱导的防御表型 | 第72-79页 |
| 1. 引言 | 第72页 |
| 2. 方法与材料 | 第72-73页 |
| 2.1 供试材料 | 第72-73页 |
| 2.2 主要试剂 | 第73页 |
| 2.3 主要培养基 | 第73页 |
| 2.4 主要器材 | 第73页 |
| 2.5 试验方法 | 第73页 |
| 3. 实验结果 | 第73-78页 |
| 3.1 int51的功能性互补实验 | 第73-74页 |
| 3.2 int51影响了snc1-1根的生长 | 第74-75页 |
| 3.3 int51增强snc1的矮化表型并不影响snc1的抗病性 | 第75-76页 |
| 3.4 rboh突变能够部分抑制int51snc1的生长缺陷 | 第76-78页 |
| 4. 讨论 | 第78-79页 |
| 第六章 综合结论和创新之处 | 第79-80页 |
| 附录 | 第80-89页 |
| 参考文献 | 第89-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
| 博士期间发表的论文 | 第101页 |
