| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 前言 | 第13-19页 |
| 1 内耳疾病的治疗现状 | 第13页 |
| 2 耳的结构特点及内耳（局部）给药的可行性分析 | 第13-15页 |
| 3 纳米粒及其在内耳给药中的应用 | 第15-16页 |
| 4 温敏凝胶及其在内耳给药中的应用 | 第16-17页 |
| 5 纳米-凝胶复合系统及其在内耳给药中的应用 | 第17-18页 |
| 6 本课题的研究内容和意义 | 第18-19页 |
| 第二章 IFNα-2b PLGA纳米粒的制备与表征 | 第19-36页 |
| 1 材料 | 第19-20页 |
| 1.1 仪器 | 第19页 |
| 1.2 试剂 | 第19-20页 |
| 2 方法 | 第20-22页 |
| 2.1 IFNα-2b含量测定方法 | 第20页 |
| 2.2 纳米粒的制备 | 第20-21页 |
| 2.3 纳米粒的包封率测定 | 第21-22页 |
| 2.4 纳米粒的粒径、形态观察 | 第22页 |
| 2.5 纳米粒的体外释放 | 第22页 |
| 3 结果 | 第22-34页 |
| 3.1 IFNα-2b含量测定方法 | 第22-24页 |
| 3.2 纳米粒包封率的测定及影响因素考察 | 第24-27页 |
| 3.3 纳米粒制备工艺的优化 | 第27-32页 |
| 3.4 纳米粒的粒径、形态学观察 | 第32-33页 |
| 3.5 纳米粒的体外释放 | 第33-34页 |
| 4 讨论 | 第34-36页 |
| 4.1 干扰素含量测定 | 第34页 |
| 4.2 纳米粒的制备工艺 | 第34-35页 |
| 4.3 包封率的测定 | 第35页 |
| 4.4 纳米粒的体外释放 | 第35-36页 |
| 第三章 IFNα-2b泊洛沙姆温敏凝胶及其复合释药系统的制备与表征 | 第36-47页 |
| 1 材料 | 第36-37页 |
| 1.1 仪器 | 第36页 |
| 1.2 试剂 | 第36-37页 |
| 2 方法 | 第37-38页 |
| 2.1 泊洛沙姆温敏凝胶的制备 | 第37页 |
| 2.2 胶凝温度的测定 | 第37页 |
| 2.3 凝胶溶蚀率 | 第37页 |
| 2.4 载药凝胶体外释放 | 第37-38页 |
| 2.5 流变学测试 | 第38页 |
| 3 结果 | 第38-46页 |
| 3.1 P407和P188浓度对胶凝温度的影响 | 第38-40页 |
| 3.2 水凝胶的溶液-凝胶观察 | 第40页 |
| 3.3 泊洛沙姆温敏凝胶的溶蚀 | 第40-41页 |
| 3.4 载药凝胶体外释放 | 第41-43页 |
| 3.5 流变学结果 | 第43-46页 |
| 4 讨论 | 第46-47页 |
| 4.1 胶凝温度的选择 | 第46页 |
| 4.2 泊洛沙姆凝胶处方调整与选择 | 第46-47页 |
| 第四章 IFNα-2b壳聚糖温敏凝胶及其复合释药系统的制备与表征 | 第47-63页 |
| 1 材料 | 第47-48页 |
| 1.1 仪器 | 第47页 |
| 1.2 试剂 | 第47-48页 |
| 2 方法 | 第48-51页 |
| 2.1 壳聚糖温敏凝胶的制备 | 第48页 |
| 2.2 成胶情况观察与胶凝时间确定 | 第48页 |
| 2.3 壳聚糖凝胶红外表征 | 第48-49页 |
| 2.4 凝胶溶胀和保水率实验 | 第49页 |
| 2.5 凝胶的体外降解实验 | 第49-50页 |
| 2.6 扫描电镜观察 | 第50页 |
| 2.7 流变学测试 | 第50页 |
| 2.8 载药壳聚糖凝胶体外释放 | 第50-51页 |
| 3 结果 | 第51-61页 |
| 3.1 CS/β-GP温敏凝胶处方考察 | 第51-52页 |
| 3.2 水凝胶的溶液-凝胶转变和胶凝时间 | 第52-53页 |
| 3.3 壳聚糖凝胶的红外表征 | 第53-55页 |
| 3.4 凝胶的溶胀率和保水率 | 第55-56页 |
| 3.5 扫描电镜观察 | 第56页 |
| 3.6 凝胶的体外降解 | 第56-58页 |
| 3.7 流变学测试 | 第58-59页 |
| 3.8 载药CS/β-GP凝胶体外释放 | 第59-61页 |
| 4 讨论 | 第61-63页 |
| 4.1 壳聚糖/β-GP凝胶成胶机制探讨 | 第61页 |
| 4.2 壳聚糖凝胶制备 | 第61-63页 |
| 第五章 IFNα-2b相关剂型经内耳给药的药动学研究 | 第63-76页 |
| 1 材料 | 第63页 |
| 1.1 仪器 | 第63页 |
| 1.2 试剂 | 第63页 |
| 1.3 实验动物 | 第63页 |
| 2 方法 | 第63-64页 |
| 2.1 动物分组 | 第63-64页 |
| 2.2 给药 | 第64页 |
| 2.3 样品采集与测定 | 第64页 |
| 2.4 数据分析 | 第64页 |
| 3 结果 | 第64-73页 |
| 3.1 体内样品分析方法学考察 | 第64-66页 |
| 3.2 IFN溶液经鼓室给药后在体内的分布及药动学参数 | 第66-67页 |
| 3.3 IFN/泊洛沙姆温敏凝胶经鼓室给药后在体内的分布及药动学参数 | 第67-68页 |
| 3.4 IFN/CS温敏凝胶经鼓室给药后在体内的分布及药动学参数 | 第68-69页 |
| 3.5 IFN NPs经鼓室给药后在体内的分布及药动学参数 | 第69-70页 |
| 3.6 IFN NPs泊洛沙姆温敏凝胶经鼓室给药后在体内的分布及药动学参数 | 第70-71页 |
| 3.7 IFN NPs CS/β-GP温敏凝胶经鼓室给药后在体内的分布及药动学参数 | 第71页 |
| 3.8 药动学参数比较 | 第71-73页 |
| 4 讨论 | 第73-75页 |
| 4.1 模型动物的选择 | 第73页 |
| 4.2 体内样品采集与分析 | 第73-75页 |
| 第六章 全文总结 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-80页 |
| 英文缩写注释 | 第80-81页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
