| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 目录 | 第12-14页 |
| 符号说明 | 第14-15页 |
| 1 锰耳毒性动物模型的构建 | 第15-26页 |
| 1.1 前言 | 第15-16页 |
| 1.2 材料与方法 | 第16-19页 |
| 1.2.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.2.2 试剂与实验仪器 | 第16-17页 |
| 1.2.3 试剂配制 | 第17-18页 |
| 1.2.4 实验方法 | 第18-19页 |
| 1.3 结果 | 第19-23页 |
| 1.3.1 锰对耳蜗组织的损伤作用 | 第19-20页 |
| 1.3.2 不同浓度锰对耳蜗组织的损伤作用 | 第20-23页 |
| 1.3.3 耳蜗图 | 第23页 |
| 1.4 讨论 | 第23-25页 |
| 1.5 小结 | 第25-26页 |
| 2 NAD对锰耳毒性的保护作用及其机制 | 第26-56页 |
| 2.1 前言 | 第26-31页 |
| 2.1.1 NAD与疾病 | 第26-28页 |
| 2.1.2 细胞凋亡标志 | 第28-31页 |
| 2.2 材料与方法 | 第31-35页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第31页 |
| 2.2.2 试剂与实验仪器 | 第31-32页 |
| 2.2.3 试剂配制 | 第32页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第32-35页 |
| 2.2.5 统计学方法 | 第35页 |
| 2.3 结果 | 第35-52页 |
| 2.3.1 NAD对锰耳毒性的保护作用 | 第35-38页 |
| 2.3.2 耳蜗图 | 第38-40页 |
| 2.3.3 NAD对听神经纤维的保护作用 | 第40-43页 |
| 2.3.4 NAD对螺旋神经节细胞的保护作用 | 第43-46页 |
| 2.3.5 TUNEL染色 | 第46-49页 |
| 2.3.6 活性caspase-3,-8,-9标记 | 第49-52页 |
| 2.4 讨论 | 第52-55页 |
| 2.4.1 NAD对锰耳毒性的保护作用 | 第52-54页 |
| 2.4.2 锰的耳毒性机制 | 第54-55页 |
| 2.5 小结 | 第55-56页 |
| 3 XIAP基因对锰耳毒性的保护作用 | 第56-75页 |
| 3.1 前言 | 第56-58页 |
| 3.2 材料与方法 | 第58-63页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第59页 |
| 3.2.2 试剂与实验仪器 | 第59-60页 |
| 3.2.3 试剂配制 | 第60-62页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第62-63页 |
| 3.2.5 统计学方法 | 第63页 |
| 3.3 结果 | 第63-71页 |
| 3.3.1 重组质粒pEGFPN1-XIAP的测序鉴定结果 | 第63-66页 |
| 3.3.2 PEG-PEI-nHAT-pEGFPN1-XIAP在螺旋神经节细胞中的安全性 | 第66-67页 |
| 3.3.3 PEG-PEI-nHAT-pEGFPN1-XIAP对锰耳毒性的保护作用 | 第67-71页 |
| 3.4 讨论 | 第71-74页 |
| 3.5 小结 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-89页 |
| 综述1 | 第89-99页 |
| 参考文献 | 第94-99页 |
| 综述2 | 第99-109页 |
| 参考文献 | 第104-109页 |
| 综述3 | 第109-119页 |
| 参考文献 | 第114-119页 |
| 攻读博士学位期间主要的研究成果目录 | 第119-120页 |
| 致谢 | 第120页 |
