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蜜蜂卵期发育基因敲除试验

摘要第12-14页
Abstract第14-16页
1 绪论第17-33页
    1.1 蜜蜂胚胎发育第17-21页
        1.1.1 蜜蜂卵的形态第17页
        1.1.2 蜜蜂的胚胎发育过程第17-20页
            1.1.2.1 卵裂和胚盘的形成第17-18页
            1.1.2.2 胚带、胚层及胚膜的形成第18页
            1.1.2.3 胚胎的分节与附肢的形成第18-19页
            1.1.2.4 器官系统的形成第19-20页
            1.1.2.5 背合第20页
        1.1.3 影响蜜蜂胚胎发育的温湿度第20-21页
    1.2 显微注射技术第21-23页
        1.2.1 动物显微注射技术的发展应用第21-22页
        1.2.2 蜜蜂显微注射技术的研究现状第22-23页
    1.3 基因组定点编辑技术第23-29页
        1.3.1 类转录激活因子效应物核酸酶(TALEN)介导的基因组定点修饰技术第24-27页
            1.3.1.1 TALEN的设计原理第24-25页
            1.3.1.2 TALEN作用靶位点的选择第25-26页
            1.3.1.3 TALE的单元组装合成方法第26页
            1.3.1.4 TALEN技术的应用第26-27页
        1.3.2 CRISPR/Cas9介导的基因组定点编辑技术第27-29页
            1.3.2.1 CRISPR/Cas系统的结构及原理第27-28页
            1.3.2.2 CRISPR/Cas9基因打靶系统的建立及位点结构第28-29页
            1.3.2.3 CRISPR/Cas技术的应用第29页
    1.4 蜜蜂几个发育基因的研究第29-32页
        1.4.1 Dfd基因第29页
        1.4.2 Eve基因第29-30页
        1.4.3 Prd基因第30-31页
        1.4.4 Tll基因第31页
        1.4.5 Otd-1基因第31-32页
        1.4.6 En基因第32页
    1.5 蜜蜂基因组提取方法的研究现状第32-33页
2 实验材料与方法第33-54页
    2.1 意大利蜜蜂早龄胚胎(蜂卵)的移取和长距离输送器皿的制作第33-34页
        2.1.1 主要试剂及材料第33页
        2.1.2 蜂卵长距离输送器皿的制作第33页
        2.1.3 蜂卵的移取及培养第33-34页
    2.2 蜜蜂早龄胚胎显微注射第34-36页
        2.2.1 主要试剂及材料第34页
        2.2.2 主要仪器第34页
        2.2.3 几种候选注射器皿的制作第34-35页
            2.2.3.1 琼脂糖显微注射皿的制作第34页
            2.2.3.2 蓝丁胶显微注射皿的制作第34页
            2.2.3.3 巢础显微注射皿的制作第34页
            2.2.3.4 双面胶显微注射皿的制作第34-35页
        2.2.4 注射针的制备第35页
        2.2.5 注射前准备第35页
        2.2.6 显微注射技术参数的探索第35-36页
        2.2.7 样品注射第36页
            2.2.7.1 石蜡油油滴样品注射第36页
            2.2.7.2 pEGFP-N1质粒样品注射第36页
    2.3 蜜蜂基因组的快速提取第36-39页
        2.3.1 主要试剂及其实验材料第36页
            2.3.1.1 主要试剂第36页
            2.3.1.2 实验材料第36页
        2.3.2 主要仪器第36-37页
        2.3.3 蜜蜂基因组DNA的提取第37页
        2.3.4 蜜蜂基因组DNA的质量鉴定第37-39页
            2.3.4.1 特异性引物序列设计第37页
            2.3.4.2 PCR扩增第37-38页
            2.3.4.3 1%琼脂糖凝胶电泳第38页
            2.3.4.4 限制性内切酶酶切位点的确定第38页
            2.3.4.5 限制性内切酶的酶切反应第38-39页
            2.3.4.6 2%琼脂糖凝胶电泳第39页
    2.4 TALEN靶向基因敲除技术第39-46页
        2.4.1 主要实验材料与试剂第39页
        2.4.2 主要仪器第39页
        2.4.3 TALEN合成第39-46页
            2.4.3.1 TALEN位点的设计第39-40页
            2.4.3.2 靶位点序列的确定第40-41页
            2.4.3.3 TALE载体的合成第41-44页
            2.4.3.4 构建TALEN第44-46页
            2.4.3.5 合成TALEN mRNA第46页
        2.4.4 TALEN mRNA的注射第46页
    2.5 CRISPR-Cas9靶向基因敲除技术第46-50页
        2.5.1 主要试剂及材料第46-47页
        2.5.2 主要仪器第47页
        2.5.3 Cas9/gRNA合成第47-50页
            2.5.3.1 Cas9靶位点的设计第47-48页
            2.5.3.2 靶位点序列的确定第48页
            2.5.3.3 Cas9/gRNA体外转录模板的制备第48-49页
            2.5.3.4 Cas9/gRNA体外转录第49-50页
            2.5.3.5 乙醇沉淀法回收Cas9/gRNA第50页
        2.5.4 Cas9/gRNA的注射第50页
    2.6 TALEN及Cas9诱导突变的鉴定第50-53页
        2.6.1 PCR扩增第50页
        2.6.2 限制性内切酶酶切鉴定第50-51页
        2.6.3 TA克隆第51-52页
        2.6.4 转化第52页
        2.6.5 菌落PCR第52页
        2.6.6 测序比对第52-53页
    2.7 胚胎图像的获取及处理第53-54页
        2.7.1 意大利蜜蜂胚胎显微注射及发育图像的获取第53页
        2.7.2 绿色荧光图像的获取第53-54页
3 实验结果与分析第54-87页
    3.1 蜜蜂早龄胚胎长距离运输器皿的选择第54-56页
    3.2 蜜蜂早龄胚胎显微注射参数探索第56-67页
        3.2.1 适宜注射器皿的选取第57-59页
        3.2.2 注射部位的选取第59-60页
        3.2.3 注射深度的选取第60-61页
        3.2.4 注射方向的选取第61-62页
        3.2.5 注射量的选取第62-63页
        3.2.6 显微注射对蜂卵发育为幼虫时间的影响第63-64页
        3.2.7 蜜蜂早龄胚胎注射石蜡油样品第64-66页
        3.2.8 蜜蜂早龄胚胎注射pEGFP-N1质粒第66-67页
    3.3 快速提取蜜蜂基因组第67-68页
        3.3.1 PCR扩增第67页
        3.3.2 限制性内切酶酶切第67-68页
    3.4 利用TALEN技术进行基因打靶第68-78页
        3.4.1 确定En、Prd、Tll基因的靶位点序列第68-72页
            3.4.1.1 En基因第68-70页
            3.4.1.2 Prd基因第70-71页
            3.4.1.3 Tll基因第71-72页
        3.4.2 T-基因的左、右臂合成(以T-En基因为例)第72-74页
        3.4.3 TALEN-基因mRNA的合成第74-75页
        3.4.4 Tll基因TALEN靶位点的突变诱导第75-78页
            3.4.4.1 蜂卵的显微注射与培养第75页
            3.4.4.2 限制性内切酶酶切检测第75-76页
            3.4.4.3 突变Tll基因TA克隆第76-77页
            3.4.4.4 Tll基因突变产物测序第77-78页
    3.5 利用CRISPR/Cas9技术进行基因打靶第78-87页
        3.5.1 确定基因的靶位点序列第78-83页
            3.5.1.1 Dfd基因第78-79页
            3.5.1.2 Eve基因第79-80页
            3.5.1.3 Otd-1基因第80-81页
            3.5.1.4 Prd基因第81-82页
            3.5.1.5 Tll基因第82-83页
        3.5.2 靶标基因Cas9/gRNA的合成第83-84页
        3.5.3 Otd-1基因的Cas9靶位点突变诱导第84-87页
            3.5.3.1 蜂卵的显微注射与培养第84页
            3.5.3.2 突变的检测第84-85页
            3.5.3.3 突变基因的TA克隆第85-86页
            3.5.3.4 Otd-1基因突变产物测序第86-87页
4 结果讨论与展望第87-93页
    4.1 蜂卵的移取方法第87页
    4.2 蜂卵的实验室内饲养条件第87-88页
    4.3 蜂卵的显微注射操作第88-89页
        4.3.1 蜂卵显微注射条件探索第88-89页
        4.3.2 在蜂卵中注射石蜡油和pEGFP-N1第89页
    4.4 快速提取蜜蜂基因组第89-90页
    4.5 利用TALEN及CRISPR/Cas9技术进行基因打靶第90-92页
        4.5.1 技术方法第90-91页
        4.5.2 突变诱导第91页
        4.5.3 检测方法第91-92页
    4.6 展望第92-93页
参考文献第93-102页
致谢第102-103页
已发表和待发表论文第103页

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