摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
0 前言 | 第12-26页 |
0.1 海参脑苷脂 | 第12-15页 |
0.1.1 海参概述 | 第12页 |
0.1.2 脑苷脂来源及基本结构 | 第12-13页 |
0.1.3 哺乳动物及海参中的脑苷脂分子种特点 | 第13-14页 |
0.1.4 脑苷脂生物活性及应用 | 第14-15页 |
0.2 鞘脂概述 | 第15-21页 |
0.2.1 鞘脂结构与分类 | 第15-16页 |
0.2.2 鞘脂组学 | 第16-17页 |
0.2.3 鞘脂代谢 | 第17-18页 |
0.2.4 生物样本中鞘脂的提取纯化及定性定量研究 | 第18-21页 |
0.3 阿尔茨海默症 | 第21-25页 |
0.3.1 阿尔茨海默症概述 | 第21-23页 |
0.3.2 阿尔茨海默症鞘脂代谢特点 | 第23-25页 |
0.4 本研究的目的与意义 | 第25-26页 |
1 海参脑苷脂对 AD 模型小鼠脑组织鞘脂含量的影响分析 | 第26-43页 |
1.1 材料与仪器 | 第26-27页 |
1.1.1 材料与试剂 | 第26-27页 |
1.1.2 设备及仪器 | 第27页 |
1.2 实验方法 | 第27-32页 |
1.2.1 海参脑苷脂的提取纯化及纯度检测 | 第27-28页 |
1.2.2 动物实验 | 第28-29页 |
1.2.3 鼠脑组织海马及皮质的获取 | 第29页 |
1.2.4 小鼠脑组织鞘脂的提取 | 第29-30页 |
1.2.5 NPLC-MS/MS 法检测小鼠脑组织鞘脂的含量 | 第30-32页 |
1.3 结果与讨论 | 第32-42页 |
1.3.1 海参脑苷脂的提取及纯度测定 | 第32页 |
1.3.2 鼠脑组织鞘脂的提取 | 第32-33页 |
1.3.3 鞘脂含量分析方法的优化 | 第33-36页 |
1.3.4 NPLC-MS/MS 方法学考察结果 | 第36-37页 |
1.3.5 鞘脂母离子的筛选 | 第37-39页 |
1.3.6 海参脑苷脂对 AD 小鼠脑组织主要鞘脂含量的影响 | 第39-42页 |
1.4 本章小结 | 第42-43页 |
2 海参脑苷脂对 AD 模型小鼠脑组织主要鞘脂分子种的影响分析 | 第43-69页 |
2.1 材料与仪器 | 第43-44页 |
2.1.1 材料与试剂 | 第43-44页 |
2.1.2 设备及仪器 | 第44页 |
2.2 实验方法 | 第44-45页 |
2.2.1 标准溶液配制 | 第44页 |
2.2.2 样品处理及 RPLC-MS/MS 条件 | 第44页 |
2.2.3 方法学考察 | 第44-45页 |
2.2.4 数据处理 | 第45页 |
2.3 结果与讨论 | 第45-68页 |
2.3.1 色谱及质谱条件的优化 | 第45-47页 |
2.3.2 小鼠脑组织中主要鞘脂分子种的筛选 | 第47-55页 |
2.3.3 RPLC-MS/MS 方法学考察结果 | 第55页 |
2.3.4 海参脑苷脂对 AD 小鼠脑组织主要鞘脂分子种的影响 | 第55-68页 |
2.4 本章小结 | 第68-69页 |
3 海参脑苷脂对 AD 模型小鼠脑组织葡萄糖脑苷脂的影响分析 | 第69-78页 |
3.1 材料与仪器 | 第69-70页 |
3.1.1 材料与试剂 | 第69-70页 |
3.1.2 设备及仪器 | 第70页 |
3.2 实验方法 | 第70-71页 |
3.2.1 标准溶液的配制 | 第70页 |
3.2.2 样品前处理方法 | 第70页 |
3.2.3 色谱及质谱条件 | 第70-71页 |
3.2.4 方法学考察 | 第71页 |
3.3 结果与讨论 | 第71-76页 |
3.3.1 色谱及质谱条件的确定 | 第71-72页 |
3.3.2 样品溶剂的选择 | 第72页 |
3.3.3 葡萄糖脑苷脂的定性分析 | 第72-73页 |
3.3.4 HILIC LC-MS/MS 方法学考察结果 | 第73-74页 |
3.3.5 海参脑苷脂对 AD 小鼠脑组织葡萄糖脑苷脂的影响 | 第74-76页 |
3.4 本章小结 | 第76-78页 |
4 结论 | 第78-80页 |
4.1 总结 | 第78-79页 |
4.2 本论文创新点 | 第79-80页 |
5 参考文献 | 第80-89页 |
6 致谢 | 第89-90页 |
个人简历 | 第90页 |
发表的学术论文 | 第90-91页 |