| 中文摘要 | 第6-10页 |
| Abstract | 第10-14页 |
| 缩略词表 | 第15-17页 |
| 前言 | 第17-20页 |
| 实验一 电针联合热量控制对胰岛素抵抗肥胖大鼠体重,脂质代谢和胰岛素敏感性的影响 | 第20-34页 |
| 1.材料与方法 | 第20-22页 |
| 1.1 实验仪器 | 第20-21页 |
| 1.2 实验试剂 | 第21页 |
| 1.3 实验动物及分组 | 第21-22页 |
| 2.方法 | 第22-27页 |
| 2.1 胰岛素抵抗肥胖大鼠模型的评价标准 | 第22-24页 |
| 2.2 干预方法 | 第24-25页 |
| 2.3 实验取材 | 第25页 |
| 2.4 指标检测 | 第25-27页 |
| 2.5 统计分析 | 第27页 |
| 3.实验结果 | 第27-31页 |
| 3.1 电针与热量控制对IR肥胖大鼠体重的影响 | 第27-28页 |
| 3.2 电针与热量控制对IR肥胖大鼠脂质代谢影响 | 第28-29页 |
| 3.3 电针与热量控制对IR肥胖大鼠血清胰岛素的影响 | 第29-30页 |
| 3.4 电针与热量控制对IR肥胖大鼠IPITT、IPGTT的影响 | 第30页 |
| 3.5 电针与热量控制对IR肥胖大鼠胰岛素敏感性指标GIR的影响 | 第30-31页 |
| 4.讨论 | 第31-34页 |
| 4.1 电针及热控对IR肥胖大鼠脂质代谢的影响 | 第31-32页 |
| 4.2 电针及热量控制可增强IR肥胖大鼠的胰岛素敏感性 | 第32页 |
| 4.3 穴位配伍 | 第32-34页 |
| 实验二 电针联合热量控制对胰岛素抵抗肥胖大鼠脂肪因子Leptin、resistin以及白色脂肪细胞形态的影响 | 第34-44页 |
| 1.材料与方法 | 第35-36页 |
| 1.1 实验仪器 | 第35页 |
| 1.2 实验试剂 | 第35-36页 |
| 1.3 实验动物及分组 | 第36页 |
| 2.方法 | 第36-38页 |
| 2.2 干预方法 | 第36页 |
| 2.3 取材方法 | 第36-37页 |
| 2.4 指标检测 | 第37-38页 |
| 3.实验结果 | 第38-40页 |
| 3.1 电针及热量控制对IR肥胖大鼠脂肪因子的影响 | 第38-39页 |
| 3.2 电针及热量控制对IR肥胖大鼠白色脂肪细胞形态的影响 | 第39-40页 |
| 4.讨论 | 第40-44页 |
| 4.1 电针及热控通过调节大鼠血清Leptin、Resistin缓解IR状态 | 第40-42页 |
| 4.2 电针及热控对白色脂肪细胞的影响是改善IR肥胖的重要形态学基础 | 第42-44页 |
| 实验三 电针联合热量控制对胰岛素抵抗肥胖大鼠下丘脑OB-Rb、Agrp蛋白及mRNA表达的影响 | 第44-58页 |
| 1.材料与方法 | 第44-46页 |
| 1.1 实验仪器 | 第44-45页 |
| 1.2 实验试剂 | 第45-46页 |
| 1.3 实验动物及分组 | 第46页 |
| 2.方法 | 第46-52页 |
| 2.1 胰岛素抵抗肥胖大鼠模型的评价标准 | 第46页 |
| 2.2 干预方法 | 第46页 |
| 2.3 实验取材 | 第46-47页 |
| 2.4 指标检测 | 第47-52页 |
| 2.5 统计方法 | 第52页 |
| 3.实验结果 | 第52-54页 |
| 3.1 电针及热控对IR肥胖大鼠下丘脑OB-R/AGRP蛋白表达的影响 | 第52-53页 |
| 3.2 电针及热控对IR肥胖大鼠下丘脑OB-Rb、AGRPmRNA水平的影响 | 第53-54页 |
| 4.讨论 | 第54-58页 |
| 4.1 电针可以有效改善IR肥胖 | 第54-55页 |
| 4.2 热量控制是治疗IR肥胖的有效手段 | 第55-56页 |
| 4.3 瘦素抵抗在IR肥胖中有重要作用 | 第56-58页 |
| 结语 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 附录一 文献综述 | 第67-77页 |
| 参考文献 | 第73-77页 |
| 硕士期间发表论文 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
