| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 第1章 材料 | 第9-11页 |
| 1.1 研究对象 | 第9页 |
| 1.2 主要试剂 | 第9页 |
| 1.3 主要仪器 | 第9-11页 |
| 第2章 方法 | 第11-18页 |
| 2.1 淋巴瘤细胞株及去甲基化处理后的淋巴瘤细胞株中CHFR基因mRNA表达水平检测 | 第11-14页 |
| 2.1.1 引物设计与合成 | 第11页 |
| 2.1.2 细胞株培养与去甲基化处理 | 第11页 |
| 2.1.3 淋巴瘤细胞株及淋巴结组织中RNA提取 | 第11-12页 |
| 2.1.4 逆转录反应 | 第12-13页 |
| 2.1.5 PCR反应 | 第13页 |
| 2.1.6 琼脂糖凝胶电泳 | 第13-14页 |
| 2.2 MSP检测Raji细胞中CHFR基因甲基化状态 | 第14-16页 |
| 2.2.1 细胞中DNA的提取 | 第14页 |
| 2.2.2 亚硫酸氢钠修饰基因组DNA | 第14-15页 |
| 2.2.3 DNA纯化过柱回收 | 第15页 |
| 2.2.4 甲基化特异性PCR阳性对照 | 第15-16页 |
| 2.2.5 甲基化特异性PCR扩增(MSP) | 第16页 |
| 2.2.6 琼脂糖凝胶电泳 | 第16页 |
| 2.3 CCK-8检测5-氮杂-2'-脱氧胞苷对细胞增殖的影响 | 第16-17页 |
| 2.4 流式细胞术检测5-氮杂-2'-脱氧胞苷对细胞凋亡的影响 | 第17页 |
| 2.5 统计学处理 | 第17-18页 |
| 第3章 结果 | 第18-23页 |
| 3.1 反应性增生淋巴结组织及淋巴瘤细胞株中CHFR基因表达水平检测. | 第18页 |
| 3.2 去甲基化试剂处理后的淋巴瘤细胞株中CHFR基因mRNA表达水平检测 | 第18页 |
| 3.3 不同浓度5-氮杂-2'-脱氧胞苷处理后CHFR基因甲基化状态 | 第18页 |
| 3.4 CCK-8检测不同浓度5-氮杂-2'-脱氧胞苷处理Raji细胞后的增殖抑制率 | 第18-19页 |
| 3.5 流式细胞术检测不同浓度5-氮杂-2'-脱氧胞苷处理Raji细胞后细胞凋亡的情况 | 第19-23页 |
| 第4章 讨论 | 第23-27页 |
| 4.1 非霍奇金淋巴瘤中CHFR基因的表达及启动子区的甲基化 | 第23-24页 |
| 4.2 CHFR基因及甲基化与淋巴瘤的恶性程度及预后 | 第24页 |
| 4.3 去甲基化试剂与非霍奇金淋巴瘤 | 第24-25页 |
| 4.4 展望 | 第25-27页 |
| 第5章 结论 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-32页 |
| 综述 | 第32-46页 |
| 参考文献 | 第40-46页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第46-47页 |
| 附录 | 第47-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
