| 英文缩略词表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 1.前言 | 第16-18页 |
| 2.实验材料 | 第18-23页 |
| 2.1 实验动物 | 第18页 |
| 2.2 小鼠基因型鉴定（genotyping） | 第18-19页 |
| 2.3 药物与试剂 | 第19-20页 |
| 2.4 仪器与设备 | 第20-22页 |
| 2.5 主要溶剂及试剂的配制 | 第22-23页 |
| 3.实验方法 | 第23-38页 |
| 3.1 70%肝切除(PHx)模型的建立 | 第23-24页 |
| 3.2 肝脏再生检测 | 第24-25页 |
| 3.3 小鼠肝脏组织H&E染色 | 第25页 |
| 3.4 小鼠肝脏组织油红O染色 | 第25-26页 |
| 3.5 小鼠肝脏糖原PAS染色 | 第26页 |
| 3.6 小鼠肝脏组织糖原含量检测 | 第26-27页 |
| 3.7 肝组织甘油三酯含量检测 | 第27-28页 |
| 3.8 实时定量RT-PCR(qRT-PCR) | 第28-30页 |
| 3.9 蛋白免疫印记法 | 第30-32页 |
| 3.10 基因芯片分析 | 第32-37页 |
| 3.11 统计学处理 | 第37-38页 |
| 4.实验结果 | 第38-49页 |
| 4.1 小鼠2/3PHx手术造模成功 | 第38页 |
| 4.2 T小鼠PHx后12和32h肝脏PPARα表达较Sham组升高 | 第38-39页 |
| 4.3 细胞特异性PPARα敲除小鼠的鉴定结果 | 第39-40页 |
| 4.4 细胞PPARα促进PHx后小鼠的肝再生 | 第40-41页 |
| 4.5 特异性敲除肝细胞PPARα可抑制细胞增殖相关基因的表达 | 第41-43页 |
| 4.6 DNA损伤修复相关基因在Pparα△Hep小鼠中表达降低 | 第43-44页 |
| 4.7 PHx12小时后Pparα△Hep 小鼠和对照小鼠肝脏基因表达谱分析 | 第44-46页 |
| 4.8 PHx后Pparα△Hep小鼠肝脏的脂质堆积增加 | 第46-47页 |
| 4.9 特异敲除小鼠肝脏PPARa抑制小鼠糖代谢 | 第47-49页 |
| 5.讨论 | 第49-51页 |
| 6.结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 附录 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 综述一 肝再生的研究进展 | 第59-81页 |
| 参考文献 | 第70-81页 |
| 综述二 代谢与肝再生关系的研究进展 | 第81-93页 |
| 参考文献 | 第88-93页 |
