| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 英文缩略符号表 | 第8-13页 |
| 1 文献综述 | 第13-23页 |
| 1.1 次生代谢物 | 第13-14页 |
| 1.2 萜类 | 第14页 |
| 1.3 萜类的生物学功能 | 第14-15页 |
| 1.4 萜类化合物的合成途径 | 第15-17页 |
| 1.5 萜烯合酶 | 第17-18页 |
| 1.6 玉米中萜类化合物的研究 | 第18-21页 |
| 1.6.1 玉米倍半萜 | 第18-19页 |
| 1.6.2 玉米二萜 | 第19-21页 |
| 1.7 微生物代谢工程 | 第21-22页 |
| 1.8 本研究的目的意义 | 第22-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第23页 |
| 2.1.2 真菌材料 | 第23页 |
| 2.1.3 载体及菌株 | 第23页 |
| 2.2 试剂及仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.2 主要培养基的配置 | 第24页 |
| 2.2.3 仪器 | 第24页 |
| 2.3 实验方法与步骤 | 第24-34页 |
| 2.3.1 材料处理 | 第24-25页 |
| 2.3.2 萜烯合酶基因的克隆 | 第25-28页 |
| 2.3.3 微生物代谢工程 | 第28-29页 |
| 2.3.4 ZmTPS7主要产物的纯化与NMR分析 | 第29页 |
| 2.3.5 萜烯合酶ZmTPS7活性的鉴定 | 第29-30页 |
| 2.3.6 ZmTPS7在拟南芥中稳定过表达 | 第30-31页 |
| 2.3.7 检测和测量玉米中τ-cadinol的含量 | 第31页 |
| 2.3.8 τ-cadinol的抗菌活性分析 | 第31-32页 |
| 2.3.9 ZmTPS7启动子的分析 | 第32页 |
| 2.3.10 萜烯合酶相关基因的表达模式分析 | 第32-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-51页 |
| 3.1 ZmTPS7的功能鉴定及表达分析 | 第34-45页 |
| 3.1.1 微生物代谢工程分析ZmTPS7的生化功能 | 第34-36页 |
| 3.1.2 ZmTPS7主要产物结构的鉴定 | 第36页 |
| 3.1.3 ZmTPS7酶活性的分析 | 第36-38页 |
| 3.1.4 ZmTPS7基因表达模式的分析 | 第38-40页 |
| 3.1.5 τ-cadinol在玉米中被诱导产生 | 第40-41页 |
| 3.1.6 τ-cadinol的抗菌活性分析 | 第41-43页 |
| 3.1.7 ZmTPS7转基因拟南芥的筛选与鉴定 | 第43-44页 |
| 3.1.8 ZmTPS7启动子顺式元件分析 | 第44-45页 |
| 3.2 ZmKSL2与ZmKSL4的功能鉴定及表达分析 | 第45-51页 |
| 3.2.1 ZmKSL2与ZmKSL4的生化功能分析 | 第45-47页 |
| 3.2.2 ZmKSL2与ZmKSL4基因表达模式的分析 | 第47-49页 |
| 3.2.3 ZmKSL2与ZmKSL4启动子顺式元件分析 | 第49-51页 |
| 4 讨论与结论 | 第51-56页 |
| 4.1 讨论 | 第51-54页 |
| 4.1.1 玉米中τ-cadinol的发现及τ-cadinol合成酶的功能鉴定 | 第51页 |
| 4.1.2 τ-cadinol的生物活性分析 | 第51-52页 |
| 4.1.3 ZmTPS7基因被生物和非生物胁迫所诱导 | 第52页 |
| 4.1.4 ZmKSL2和ZmKSL4能催化CPP形成二萜 | 第52-53页 |
| 4.1.5 ZmKSL2参与Kauralexin B1-B3的生物合成 | 第53-54页 |
| 4.1.6 ZmKSL2和ZmKSL4基因被胁迫诱导表达 | 第54页 |
| 4.2 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 附录 | 第64-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第68页 |
