| 英文缩写一览表 | 第8-10页 |
| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-40页 |
| 1.1 周围神经损伤 | 第14-15页 |
| 1.2 周围神经损伤研究的现状 | 第15-16页 |
| 1.3 种子细胞在周围神经损伤的应用 | 第16-24页 |
| 1.3.1 嗅球成鞘细胞(OECs) | 第16-18页 |
| 1.3.2 雪旺氏细胞(SCs) | 第18-20页 |
| 1.3.3 骨髓基质干细胞(BMSCs) | 第20-21页 |
| 1.3.4 神经干细胞(NSCs) | 第21-22页 |
| 1.3.5 神经嵴干细胞(NCSCs) | 第22-24页 |
| 1.4 生物材料在周围神经损伤中的应用 | 第24-25页 |
| 1.4.1 天然生物材料 | 第24页 |
| 1.4.2 天然可降解材料 | 第24-25页 |
| 1.4.3 人工合成可降解材料 | 第25页 |
| 1.4.4 人工合成不可降解材料 | 第25页 |
| 1.5 周围神经损伤修复的评价方法 | 第25-27页 |
| 1.5.1 大体与形态学修复的评价 | 第26页 |
| 1.5.2 组织学修复的评价 | 第26-27页 |
| 1.5.3 神经-肌肉功能修复的评价 | 第27页 |
| 1.6 参考文献 | 第27-40页 |
| 第2章 本研究的思路和研究内容 | 第40-44页 |
| 2.1 研究的思路 | 第40-41页 |
| 2.2 研究目的和意义 | 第41页 |
| 2.3 研究内容 | 第41-44页 |
| 2.3.1 表皮神经嵴干细胞与PLGA的生物相容性 | 第41页 |
| 2.3.2 周围神经组织液对大鼠表皮神经嵴干细胞体外诱导分化影响 | 第41页 |
| 2.3.3 表皮神经嵴干细胞修复大鼠坐骨神经缺损 | 第41-44页 |
| 第3章 表皮神经嵴干细胞的分离、培养与鉴定 | 第44-50页 |
| 3.1 材料 | 第44-45页 |
| 3.1.1 动物 | 第44页 |
| 3.1.2 试剂 | 第44-45页 |
| 3.1.3 主要仪器及实验用品 | 第45页 |
| 3.2 方法 | 第45-46页 |
| 3.2.1 表皮神经嵴干细胞的分离 | 第45页 |
| 3.2.2 台盼蓝活性测定 | 第45-46页 |
| 3.2.3 表皮神经嵴干细胞的培养 | 第46页 |
| 3.2.4 细胞免疫荧光组化鉴定 | 第46页 |
| 3.3 结果 | 第46-48页 |
| 3.3.1 台盼蓝活性测定 | 第46页 |
| 3.3.2 表皮神经干细胞的形态学观察 | 第46-47页 |
| 3.3.3 表皮神经干细胞的免疫鉴定 | 第47-48页 |
| 3.4 讨论 | 第48-49页 |
| 3.5 小结 | 第49-50页 |
| 第4章 表皮神经嵴干细胞与PLGA的生物相容性研究 | 第50-62页 |
| 4.1 材料 | 第50-51页 |
| 4.1.1 动物 | 第50页 |
| 4.1.2 试剂 | 第50-51页 |
| 4.1.3 主要仪器及实验用品 | 第51页 |
| 4.2 方法 | 第51-54页 |
| 4.2.1 PLGA膜的制备 | 第51页 |
| 4.2.2 表皮神经嵴干细胞分离与鉴定 | 第51页 |
| 4.2.3 EPI-NCSCs与PLGA膜的共培养及其观察 | 第51页 |
| 4.2.4 MTT比色法检测细胞粘附、增殖能力 | 第51-52页 |
| 4.2.5 流式细胞仪检测细胞周期及DNA倍体分析 | 第52-54页 |
| 4.2.6 统计学分析 | 第54页 |
| 4.3 结果 | 第54-58页 |
| 4.3.1 EPI-NCSCs与PLGA膜的共培养及其观察 | 第54页 |
| 4.3.2 MTT分析 | 第54-56页 |
| 4.3.3 细胞周期及DNA倍体分析 | 第56-58页 |
| 4.4 讨论 | 第58-59页 |
| 4.5 小结 | 第59-62页 |
| 第5章 周围神经组织液对大鼠表皮神经嵴干细胞体外分化影响 | 第62-74页 |
| 5.1 材料 | 第62-64页 |
| 5.1.1 动物 | 第62页 |
| 5.1.2 试剂 | 第62-63页 |
| 5.1.3 主要仪器及实验用品 | 第63-64页 |
| 5.2 方法 | 第64-65页 |
| 5.2.1 EPI-NCSCs的原代培养鉴定 | 第64页 |
| 5.2.2 周围神经组织液的制备 | 第64页 |
| 5.2.3 实验分组 | 第64页 |
| 5.2.4 形态学观察 | 第64页 |
| 5.2.5 MTT分析 | 第64页 |
| 5.2.6 RT-PCR(S-100,GFAP,β-(?) Tubulin) | 第64-65页 |
| 5.2.7 细胞免疫化学(S-100,GFAP,β-Ⅲ Tubulin)分析 | 第65页 |
| 5.3 结果 | 第65-70页 |
| 5.3.1 MTT | 第65-66页 |
| 5.3.2 RT-PCR分析 | 第66-67页 |
| 5.3.3 EPI-NCSCs形态学观察 | 第67页 |
| 5.3.4 细胞免疫化学分析 | 第67-70页 |
| 5.4 讨论 | 第70-72页 |
| 5.5 小结 | 第72-74页 |
| 第6章 表皮神经嵴干细胞修复大鼠坐骨神经缺损研究 | 第74-88页 |
| 6.1 材料 | 第75-76页 |
| 6.1.1 动物 | 第75页 |
| 6.1.2 试剂 | 第75页 |
| 6.1.3 主要仪器及实验用品 | 第75-76页 |
| 6.2 方法 | 第76-79页 |
| 6.2.1 PLGA神经导管的制备 | 第76-77页 |
| 6.2.2 表皮神经嵴干细胞的分离、培养与鉴定 | 第77页 |
| 6.2.3 动物模型的建立与分组 | 第77页 |
| 6.2.4 大体与形态学观察 | 第77页 |
| 6.2.5 组织标本的获取和制备 | 第77-78页 |
| 6.2.6 感觉功能检测 | 第78页 |
| 6.2.7 运动功能检测 | 第78-79页 |
| 6.2.8 腓肠肌湿重恢复率的测定 | 第79页 |
| 6.2.9 神经电生理检测 | 第79页 |
| 6.3 结果 | 第79-84页 |
| 6.3.1 大体与形态学观察结果 | 第79-80页 |
| 6.3.2 术部的形态学观察 | 第80-81页 |
| 6.3.3 感觉功能检测 | 第81页 |
| 6.3.4 运动功能检测 | 第81-82页 |
| 6.3.5 腓肠肌湿重恢复率 | 第82-83页 |
| 6.3.6 神经传导速度与复合肌肉动作电位检测 | 第83-84页 |
| 6.4 讨论 | 第84-86页 |
| 6.5 小结 | 第86-88页 |
| 结论 | 第88-90页 |
| 参考文献 | 第90-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
| 在读研期间所发表的文章 | 第96页 |
| 在读研期间参加科研情况 | 第96页 |
