摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
缩略语 | 第10-11页 |
前言 | 第11-17页 |
参考文献 | 第14-17页 |
第一章 高表达β_1-AR/CHO-S细胞株的构建 | 第17-27页 |
1. 实验方法 | 第17-22页 |
1.1 材料 | 第17页 |
1.2 主要仪器 | 第17页 |
1.3 表达质粒pEGFP-N1/β_1-AR的构建 | 第17-19页 |
1.4 CHO-S细胞的培养 | 第19页 |
1.5 抗生素浓度筛选 | 第19-20页 |
1.6 细胞转染 | 第20页 |
1.7 测定转染效率 | 第20-22页 |
2. 实验结果 | 第22-26页 |
3. 结论 | 第26-27页 |
第二章 高表达β_1-AR细胞膜色谱模型的建立 | 第27-32页 |
1. 实验方法 | 第27-29页 |
1.1 试剂与材料 | 第27页 |
1.2 制备高表达β_1-AR/CHO细胞膜 | 第27页 |
1.3 细胞膜色谱固定相的制备 | 第27页 |
1.4 β_1-AR/CMC柱的制备 | 第27-28页 |
1.5 标准溶液的制备 | 第28页 |
1.6 β_1-AR/CMC分析 | 第28页 |
1.7 UPLC/MS分析 | 第28-29页 |
1.8 建立β_1AR/CMC-Offline-UPLC/MS分析方法 | 第29页 |
2. 实验结果 | 第29-31页 |
3. 结论 | 第31-32页 |
第三章 中药独活中活性成分的筛选 | 第32-36页 |
1. 实验方法 | 第32-33页 |
1.1 试剂与材料 | 第32页 |
1.2 供试品溶液的制备 | 第32页 |
1.3 筛选中药独活活性成分 | 第32-33页 |
1.4 在β_1-AR/CMC色谱的竞争性结合实验 | 第33页 |
2. 实验结果 | 第33-35页 |
3. 结论 | 第35-36页 |
第四章 活性成分对β_1-AR的作用 | 第36-41页 |
1. 实验方法 | 第36-38页 |
1.1 试剂与材料 | 第36页 |
1.2 仪器 | 第36页 |
1.3 细胞毒性测定 | 第36页 |
1.4 活性化合物对β_1-AR下游信号因子cAMP及PKA表达水平的影响 | 第36-37页 |
1.5 对细胞凋亡的影响 | 第37-38页 |
2. 实验结果 | 第38-40页 |
3. 结论 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-43页 |
综述 β_1肾上腺素受体的研究进展 | 第43-49页 |
参考文献 | 第45-49页 |
个人简历 | 第49-50页 |
致谢 | 第50页 |