| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第11-15页 |
| 第二章 实验材料 | 第15-21页 |
| 2.0 实验动物 | 第15页 |
| 2.1 实验细胞 | 第15页 |
| 2.2 主要试剂 | 第15-17页 |
| 2.3 主要相关工作液配方信息 | 第17-19页 |
| 2.4 主要仪器与耗材信息 | 第19-21页 |
| 第三章 朊蛋白在LPS诱导的炎症动物模型中的研究 | 第21-48页 |
| 3.1 实验方法 | 第21-29页 |
| 3.1.1 小鼠基因型鉴定 | 第21-23页 |
| 3.1.2 LPS给药方案及组织的提取处理 | 第23-24页 |
| 3.1.3 组织包埋与石蜡切片 | 第24-25页 |
| 3.1.4 CD4细胞IHC染色与计数 | 第25-26页 |
| 3.1.5 组织RNA提取与荧光定量逆转录PCR | 第26-28页 |
| 3.1.6 组织蛋白提取及WesternBlotting | 第28-29页 |
| 3.2 数据统计与分析 | 第29-30页 |
| 3.3 实验结果 | 第30-48页 |
| 3.3.1 小鼠基因型鉴定结果 | 第30-31页 |
| 3.3.2 10mg/kgLPS单剂量炎症模型 | 第31-40页 |
| 3.3.3 1mg/kgLPS重复剂量炎症模型 | 第40-48页 |
| 第四章 朊蛋白在LPS诱导的HT29结肠细胞炎症中的功能研究 | 第48-53页 |
| 4.1 实验方法 | 第48-50页 |
| 4.1.1 慢病毒细胞株系建立 | 第48-49页 |
| 4.1.2 WesternBlotting确定细胞朊蛋白表达量 | 第49页 |
| 4.1.3 细胞的炎症诱导 | 第49-50页 |
| 4.2 HT29细胞系的构建及LPS诱导结果 | 第50-53页 |
| 4.2.1 慢病毒构建朊蛋白敲低HT29细胞系 | 第50-51页 |
| 4.2.2 LPS诱导HT29产生炎症 | 第51-53页 |
| 第五章 讨论 | 第53-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 第六章 综述 朊蛋白对炎症发生发展的作用研究进展 | 第57-63页 |
| 6.1 朊蛋白在神经系统中可能的炎症调控作用 | 第57-61页 |
| 6.2 朊蛋白在非神经系统中的炎症调控作用 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-72页 |
| 附录 | 第72-73页 |
| 缩略词 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 在学期间所取得的科研成果 | 第74页 |
