| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-14页 |
| 材料和方法 | 第14-29页 |
| 1. 材料 | 第14-18页 |
| 1.1 实验动物 | 第14页 |
| 1.2 主要的仪器及设备 | 第14-15页 |
| 1.3 主要试剂 | 第15-16页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第16-18页 |
| 2.方法 | 第18-28页 |
| 2.1 清胰汤含药血清制备 | 第18页 |
| 2.2 BMSCs的培养和鉴定 | 第18-19页 |
| 2.3 LPS诱导受损肺组织培养基 | 第19页 |
| 2.4 ICM诱导BMSCs向肺泡Ⅰ型细胞、肺泡Ⅱ型细胞分化及清胰汤的干预 | 第19页 |
| 2.5 免疫荧光细胞化学鉴定AQP-5、SP-C | 第19-20页 |
| 2.6 5%去氧胆酸钠诱导大鼠SAP-ALI模型 | 第20页 |
| 2.7 动物分组、BMSCs移植和清胰汤给药方案 | 第20页 |
| 2.8 血清、肺组织匀浆及肺组织样本的制备 | 第20-21页 |
| 2.9 血清及肺组织匀浆中炎症因子TNF-α、IL-6 测定 | 第21-22页 |
| 2.10 血清Amylase、SOD和MDA的测定 | 第22-24页 |
| 2.11 SP-A、SP-B、SP-C、AQP-5mRNA表达 | 第24-27页 |
| 2.12 SP-C、AQP-5 蛋白表达 | 第27-28页 |
| 3.统计学方法 | 第28-29页 |
| 结果 | 第29-41页 |
| 1.大鼠BMSCS的形态学特征 | 第29-30页 |
| 2.ICM诱导BMSCs向肺泡Ⅰ型细胞、肺泡Ⅱ型细胞分化及清胰汤的干预作用 | 第30-33页 |
| 3.SD大鼠一般情况及 24h死亡率 | 第33-34页 |
| 4.肺组织病理学变化及肺湿干比 | 第34-36页 |
| 5.清胰汤协同BMSCs降低血清中的Amylase、MDA，升高SOD活性 | 第36-37页 |
| 6.清胰汤协同BMSCs降低血清及肺组织匀浆中IL-6 的水平 | 第37-38页 |
| 7.清胰汤协同BMSCs降低血清及肺组织匀浆中TNF-a的水平 | 第38-39页 |
| 8.清胰汤可协同BMSCs上调SP-A、SP-B、SP-C、AQP-5m RNA表达水平 | 第39-40页 |
| 9.清胰汤可协同BMSCs上调SP-C、AQP-5 蛋白表达水平 | 第40-41页 |
| 讨论 | 第41-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 综述 | 第50-58页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 病例报告 | 第58-62页 |
| 1.病例资料 | 第58-59页 |
| 2.讨论 | 第59-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
