| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 目次 | 第13-17页 |
| 插图清单 | 第17-20页 |
| 表格清单 | 第20-21页 |
| 英文缩略表 | 第21-24页 |
| 第一章 绪论 | 第24-57页 |
| 提要 | 第24页 |
| 1.1 研究背景 | 第24-38页 |
| 1.1.1 毒素简介 | 第24-26页 |
| 1.1.2 转基因作物及其风险 | 第26-32页 |
| 1.1.3 黄曲霉毒素及其危害 | 第32-38页 |
| 1.2 毒素或其相关衍生品的检测方法概述 | 第38-43页 |
| 1.2.1 转基因作物检测方法概述 | 第38-40页 |
| 1.2.2 黄曲霉毒素检测方法概述 | 第40-43页 |
| 1.3 免疫分析检测毒素的国内外研究进展 | 第43-52页 |
| 1.3.1 转基因作物免疫分析研究进展 | 第44-49页 |
| 1.3.2 黄曲霉毒素免疫分析研究进展 | 第49-52页 |
| 1.4 免疫分析方法用于毒素检测所尚存的问题 | 第52-54页 |
| 1.5 立题的目的意义和主要研究内容 | 第54-57页 |
| 1.5.1 选题的来源、目的和意义 | 第54-55页 |
| 1.5.2 研究内容和研究目标 | 第55页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第55-57页 |
| 第二章 基于磁珠转运的半自动酶联免疫吸附测定检测甲胎蛋白 | 第57-72页 |
| 提要 | 第57页 |
| 2.1 引言 | 第57-59页 |
| 2.2 材料和方法 | 第59-64页 |
| 2.2.1 材料和试剂 | 第59-61页 |
| 2.2.2 仪器设备 | 第61-62页 |
| 2.2.3 通过水热法合成Fe_3O_4磁珠 | 第62页 |
| 2.2.4 磁珠的表面修饰 | 第62页 |
| 2.2.5 制备固定有一抗的免疫磁珠(Ab-MBs) | 第62-63页 |
| 2.2.6 免疫分析 | 第63-64页 |
| 2.2.7 数据处理 | 第64页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第64-70页 |
| 2.3.1 磁珠表征 | 第64-65页 |
| 2.3.2 磁珠和AFP一抗之间生物链接的优化 | 第65-67页 |
| 2.3.3 比较Mts-ELISA与经典ELISA | 第67-69页 |
| 2.3.4 比较Mts-ELISA与手动磁ELISA | 第69-70页 |
| 2.4 本章小结 | 第70-72页 |
| 第三章 基于磁珠转运的半自动酶联免疫吸附测定检测转基因蛋白Cry1Ab | 第72-84页 |
| 提要 | 第72页 |
| 3.1 引言 | 第72-73页 |
| 3.2 材料和方法 | 第73-77页 |
| 3.2.1 材料和试剂 | 第73页 |
| 3.2.2 仪器设备 | 第73-74页 |
| 3.2.3 水热法制备Fe_3O_4纳米磁珠 | 第74页 |
| 3.2.4 磁珠的表面修饰 | 第74-75页 |
| 3.2.5 免疫磁珠的制备 | 第75-77页 |
| 3.2.6 基于自动磁珠转运的Mts-ELISA | 第77页 |
| 3.2.7 比色分析 | 第77页 |
| 3.3 结果与分析 | 第77-83页 |
| 3.3.1 Fe_3O_4纳米磁珠的制备及表征 | 第77-79页 |
| 3.3.2 磁珠的功能化 | 第79页 |
| 3.3.3 免疫检测与比色分析 | 第79-80页 |
| 3.3.4 Mts-ELISA与商业化手动磁ELISA的对比 | 第80-83页 |
| 3.4 本章小结 | 第83-84页 |
| 第四章 基于夹心体系的竞争性酶联免疫吸附测定检测黄曲霉毒素B1 | 第84-116页 |
| 提要 | 第84-85页 |
| 4.1 引言 | 第85-89页 |
| 4.2 材料和方法 | 第89-93页 |
| 4.2.1 材料和试剂 | 第89页 |
| 4.2.2 仪器设备 | 第89页 |
| 4.2.3 生物素标记抗体 | 第89-90页 |
| 4.2.4 用高碘酸钠法制备HRP标记的黄曲霉毒素抗体(HRP-anti-AFB1) | 第90-92页 |
| 4.2.5 夹心法检测BSA-AFB1 | 第92页 |
| 4.2.6 基于夹心法的竞争性ELISA检测AFB1及优化 | 第92页 |
| 4.2.6.1 基于夹心法的竞争性ELISA检测AFB1(Biotin-Ab/SA-PolyHRP40体系) | 第92页 |
| 4.2.6.2 基于夹心法的竞争性ELISA检测AFB1(HRP-anti-AFB1体系,Sandwichbased competitive direct ELISA) | 第92页 |
| 4.2.7 与常规的直接竞争ELISA比较 | 第92-93页 |
| 4.2.8 食品基质的配制及基质中的AFB1检测 | 第93页 |
| 4.2.9 检测中的条件优化及比较 | 第93页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第93-114页 |
| 4.3.1 生物素标记AFB1抗体 | 第93-97页 |
| 4.3.2 HRP-anti-AFB1的制备与表征 | 第97-101页 |
| 4.3.3 夹心法检测“新抗原”BSA-AFB1 | 第101-102页 |
| 4.3.4 基于夹心法的竞争性ELISA检测AFB1(Biotin-Ab/SA-PolyHRP40体系) | 第102-103页 |
| 4.3.5 基于夹心法的竞争性ELISA检测AFB1(HRP-anti-AFB1体系,第一批次) | 第103-108页 |
| 4.3.6 夹心竞争法检测AFB1优化(HRP-anti-AFB1体系,第二批次) | 第108-109页 |
| 4.3.7 夹心竞争法与直接竞争法的比较 | 第109-112页 |
| 4.3.8 食品基质中的方法评价 | 第112-113页 |
| 4.3.9 部分操作条件的对比 | 第113-114页 |
| 4.4 本章小结 | 第114-116页 |
| 第五章 基于聚合辣根过氧化物酶进行信号放大的间接ELISA检测黄曲霉毒素B1 | 第116-128页 |
| 提要 | 第116页 |
| 5.1 引言 | 第116-119页 |
| 5.2 材料和方法 | 第119-121页 |
| 5.2.1 材料和试剂 | 第119页 |
| 5.2.2 仪器设备 | 第119页 |
| 5.2.3 生物素标记抗体 | 第119页 |
| 5.2.4 间接竞争法检测AFB1 | 第119-120页 |
| 5.2.5 不同基质的AFB1标准溶液配制 | 第120页 |
| 5.2.6 曲线拟合 | 第120-121页 |
| 5.3 结果和讨论 | 第121-127页 |
| 5.3.1 间接竞争法检测AFB1(bioAb-SA体系)的条件优化 | 第121-123页 |
| 5.3.2 间接竞争法检测AFB1(DeAb-TrAb体系)条件优化 | 第123-124页 |
| 5.3.3 bioAb-SA和DeAb-TrAb的系统比较 | 第124-127页 |
| 5.4 本章小结 | 第127-128页 |
| 第六章 结论与展望 | 第128-133页 |
| 提要 | 第128页 |
| 6.1 主要研究结论 | 第128-130页 |
| 6.2 主要创新点 | 第130-131页 |
| 6.3 进一步研究展望 | 第131-133页 |
| 参考文献 | 第133-150页 |
| 科研成果 | 第150-151页 |
| 作者简介 | 第151页 |
