摘要 | 第3-6页 |
Abstract | 第6-9页 |
前言 | 第14-28页 |
1 增强UV-B辐射和HE-NE激光辐照对植物的影响 | 第14-17页 |
1.1 增强UV-B辐射对植物生长发育的影响 | 第14页 |
1.2 增强UV-B辐射对植物蛋白质及酶活性的影响 | 第14-15页 |
1.3 增强UV-B辐射对植物遗传物质的影响 | 第15-16页 |
1.4 激光对植物生长发育的影响 | 第16页 |
1.5 激光对植物蛋白质及酶活性的影响 | 第16页 |
1.6 激光对植物遗传物质的影响 | 第16-17页 |
2、着丝粒和着丝粒蛋白(CENP) | 第17-24页 |
2.1 着丝粒的结构及功能 | 第17-19页 |
2.2 着丝粒蛋白 | 第19-21页 |
2.3 CENP-A蛋白 | 第21-24页 |
2.3.1 CENP-A的结构 | 第21页 |
2.3.2 CENPA的功能 | 第21-24页 |
3、植物细胞内NO的来源 | 第24-25页 |
3.1 一氧化氮合成酶(NOS) | 第24页 |
3.2 硝酸还原酶(NR) | 第24-25页 |
3.3 非酶催化途径 | 第25页 |
4、本研究的内容和意义 | 第25-28页 |
第一章 小麦CENPA提取方法的比较和确定 | 第28-38页 |
1、材料 | 第28-29页 |
1.1 实验材料 | 第28页 |
1.2 实验主要仪器与设备 | 第28页 |
1.3 主要试剂 | 第28-29页 |
2、方法 | 第29-33页 |
2.1 种子的萌发及幼苗的培养 | 第29页 |
2.2 取材 | 第29页 |
2.3 CENPA蛋白提取 | 第29-30页 |
2.3.1 直接酸抽提法提取CENPA | 第29页 |
2.3.2 酸抽提—三氯乙酸沉淀法提取CENPA | 第29-30页 |
2.4 CENPA蛋白的定量 | 第30-31页 |
2.4.1 标准曲线的制作 | 第30-31页 |
2.4.2 CENPA蛋白含量的测定 | 第31页 |
2.5 SDS-PAGE对CENPA的检测 | 第31-32页 |
2.6 Western blot对CENPA的鉴定 | 第32-33页 |
3、结果与分析 | 第33-37页 |
3.1 标准曲线绘制 | 第33页 |
3.2 目的蛋白的百分含量 | 第33-34页 |
3.3 不同CENP-A提取方法比较 | 第34-35页 |
3.4 不同提取方法制备的CENPA样品的SDS-PAGE电泳图谱分析 | 第35-36页 |
3.5 目的蛋白CENPA的Western blot鉴定 | 第36-37页 |
4、讨论 | 第37-38页 |
第二章 增强UV-B辐射和HE-NE激光辐照对小麦CENPA含量的影响 | 第38-46页 |
1、材料 | 第38-39页 |
1.1 实验材料 | 第38页 |
1.2 实验主要仪器与设备 | 第38页 |
1.3 主要试剂 | 第38-39页 |
2、方法 | 第39-40页 |
2.1 种子的萌发 | 第39页 |
2.2 材料的处理 | 第39页 |
2.2.1 UV-B辐射处理 | 第39页 |
2.2.2 He-Ne激光处理 | 第39页 |
2.3 CENPA样品的制备 | 第39-40页 |
2.4 各组CENPA含量的测定 | 第40页 |
3、结果与分析 | 第40-43页 |
3.1 增强UV-B辐射和He-Ne激光对小麦根CENPA的影响 | 第40-42页 |
3.2 增强UV-B辐射和He-Ne激光对小麦叶CENPA的影响 | 第42-43页 |
4、讨论 | 第43-46页 |
第三章 增强UV-B辐射和HE-NE激光辐照对小麦一氧化氮合成相关酶的影响 | 第46-54页 |
1、材料 | 第46页 |
1.1 实验材料 | 第46页 |
1.2 主要设备和仪器 | 第46页 |
1.3 主要试剂 | 第46页 |
2、方法 | 第46-48页 |
2.1 种子的萌发 | 第46-47页 |
2.2 材料的处理 | 第47页 |
2.3 指标的测定 | 第47-48页 |
2.3.1 取样方法 | 第47页 |
2.3.2 一氧化氮合酶(NOS)粗提液的提取及含量测定 | 第47页 |
2.3.3 硝酸还原酶(NR)粗提液的提取及活性测定 | 第47-48页 |
2.3.4 数据分析 | 第48页 |
3 结果与分析 | 第48-52页 |
3.1 NOS含量的变化 | 第48-50页 |
3.1.1 不同处理时间对NOS含量的影响 | 第48-49页 |
3.1.2 不同处理条件对NOS含量的影响 | 第49-50页 |
3.2 NR活性的变化 | 第50-52页 |
3.2.1 标准曲线的绘制 | 第50-51页 |
3.2.2 不同处理条件对NR活性的影响 | 第51-52页 |
3.2.3 不同处理条件对NR活性的影响 | 第52页 |
4、讨论 | 第52-54页 |
4.1 关于一氧化氮合成酶 | 第52-53页 |
4.1.1 NOS与非生物胁迫 | 第52页 |
4.1.2 增强UV-B辐射和He-Ne激光对NOS含量的影响 | 第52-53页 |
4.2 关于硝酸还原酶 | 第53-54页 |
4.2.1 硝酸还原酶也是植物体内的NO合成酶 | 第53页 |
4.2.2 增强UV-B辐射和He-Ne激光对NR活性的影响 | 第53-54页 |
结论 | 第54-56页 |
致谢 | 第56-58页 |
参考文献 | 第58-72页 |
附录 | 第72页 |