| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 前言 | 第7-15页 |
| 材料与仪器 | 第15-17页 |
| 1. 材料与试剂 | 第15-16页 |
| 2. 实验仪器 | 第16-17页 |
| 实验方法 | 第17-30页 |
| 1. 重组人IDO表达及纯化 | 第17-19页 |
| 2. rhIDO生物活性测定 | 第19-24页 |
| 2.1 rhIDO活性检测体系建立 | 第19-20页 |
| 2.2 抑制类型测定 | 第20页 |
| 2.3 抑制剂Ki及IC_(50)值测定 | 第20-22页 |
| 2.4 细胞水平IDO抑制活性测定 | 第22-24页 |
| 3. 分子模拟对接 | 第24页 |
| 4. T细胞增殖反应 | 第24-25页 |
| 5. LLC肿瘤小鼠实验 | 第25-30页 |
| 5.1 Lewis肿瘤模型建立 | 第25页 |
| 5.2 实验分组 | 第25页 |
| 5.3 IDO活性(Kyn/Trp)检测 | 第25页 |
| 5.4 小鼠肿瘤组织中IDO与Foxp3的基因表达 | 第25-27页 |
| 5.5 小鼠肿瘤组织中IDO与Foxp3的蛋白表达 | 第27-28页 |
| 5.6 免疫组化检测IDO与Foxp3的表达情况 | 第28-30页 |
| 实验结果 | 第30-40页 |
| 1. rhIDO的表达与纯化 | 第30页 |
| 2. IDO活性检测体系的建立 | 第30-31页 |
| 3. HEK 293细胞瞬转结果鉴定 | 第31页 |
| 4. IDO抑制剂的筛选 | 第31-34页 |
| 4.1 CX系列IDO抑制活性的初筛 | 第31-32页 |
| 4.2 抑制类型判定及Ki、IC_(50)的测定 | 第32-33页 |
| 4.3 CX系列细胞水平抑制效果 | 第33-34页 |
| 5. 分子模拟对接分析 | 第34-35页 |
| 6. CX系列对T淋巴细胞增殖影响 | 第35-36页 |
| 7. CX-47体内抗肿瘤作用 | 第36-40页 |
| 7.1 CX-47对Lewis肺癌小鼠肿瘤生长的影响 | 第36页 |
| 7.2 CX-47对LLC小鼠中IDO活性影响 | 第36-37页 |
| 7.3 CX-47对IDO基因和蛋白水平的影响 | 第37-38页 |
| 7.4 CX-47对Foxp3基因和蛋白水平的影响 | 第38页 |
| 7.5 免疫组化检测IDO和Foxp3的表达情况 | 第38-40页 |
| 实验讨论 | 第40-42页 |
| 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 硕士期间科研成果 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
