| 摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 目录 | 第13-15页 |
| 中英文缩略语表 | 第15-16页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 1 材料与方法 | 第18-33页 |
| 1.1 材料 | 第18-19页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第18-19页 |
| 1.1.3 主要实验仪器 | 第19页 |
| 1.2 方法 | 第19-32页 |
| 1.2.1 主要药物配制 | 第19-20页 |
| 1.2.2 动物分组、VILI模型制备及L-HCA干预 | 第20-21页 |
| 1.2.3 动脉血压和心律变化 | 第21页 |
| 1.2.4 肺脏外部形态变化 | 第21页 |
| 1.2.5 肺湿重/干重比值测定 | 第21页 |
| 1.2.6 肺组织形态学观察 | 第21页 |
| 1.2.7 肺组织匀浆制备 | 第21-22页 |
| 1.2.8 肺组织蛋白浓度测定 | 第22页 |
| 1.2.9 肺组织匀浆MDA测定 | 第22-23页 |
| 1.2.10 肺组织匀浆MPO活性的测定 | 第23-24页 |
| 1.2.11 肺组织总谷胱甘肽(T-GSH)含量测定 | 第24-25页 |
| 1.2.12 Real-time PCR测定肺组织TNF-αmRNA的表达水平 | 第25-26页 |
| 1.2.13 Real-time PCR测定肺组织IL-1βmRNA的表达水平 | 第26-28页 |
| 1.2.14 Real-time PCR测定肺组织IL-8 mRNA的表达水平 | 第28-29页 |
| 1.2.15 ELISA测定肺组织TNF-α含量 | 第29-30页 |
| 1.2.16 ELISA测定肺组织IL-1β含量 | 第30页 |
| 1.2.17 Real-time PCR测定肺组织xCT、4F2hc mRNA的表达水平 | 第30-32页 |
| 1.3 统计学处理 | 第32-33页 |
| 2 结果 | 第33-48页 |
| 2.1 机械通气过程中兔动脉血压和心率的变化 | 第33-34页 |
| 2.2 兔机械通气肺损伤模型的建立 | 第34-35页 |
| 2.2.1 全肺外观的变化 | 第34页 |
| 2.2.2 肺组织湿重/干重比值(W/D)的变化 | 第34-35页 |
| 2.2.3 肺组织形态学的改变 | 第35页 |
| 2.3 肺组织胱氨酸/谷氨酸转运体mRNA的表达及机械通气肺损伤时的变化 | 第35-37页 |
| 2.4 L-HCA对兔机械通气肺损伤的影响 | 第37-41页 |
| 2.4.1 L-HCA对肺外观变化的影响 | 第37-38页 |
| 2.4.2 L-HCA对肺组织湿重/干重比值(W/D)变化的影响 | 第38页 |
| 2.4.3 L-HCA对肺组织形态学改变的影响 | 第38-40页 |
| 2.4.4 L-HCA对肺组织匀浆MDA含量变化的影响 | 第40页 |
| 2.4.5 L-HCA对肺组织匀浆MPO活性变化的影响 | 第40页 |
| 2.4.6 L-HCA对肺组织匀浆T-GSH含量变化的影响 | 第40-41页 |
| 2.5 L-HCA对机械通气肺损伤兔肺组织炎症因子表达的影响 | 第41-43页 |
| 2.5.1 L-HCA对肺组织TNF-α变化的影响 | 第41-42页 |
| 2.5.2 L-HCA对肺组织IL-1β变化的影响 | 第42-43页 |
| 2.5.3 L-HCA对肺组织IL-8 mRNA表达变化的影响 | 第43页 |
| 2.6 L-HCA对机械通气肺损伤兔肺组织胱氨酸/谷氨酸转运体MRNA表达水平变化的影响 | 第43-48页 |
| 2.6.1 L-HCA对肺组织xCT mRNA表达水平变化的影响 | 第43-46页 |
| 2.6.2 L-HCA对肺组织4F2hc mRNA表达水平变化的影响 | 第46-48页 |
| 3 讨论 | 第48-53页 |
| 3.1 机械通气肺损伤(VILI)兔模型的建立 | 第48-49页 |
| 3.2 机械通气肺损伤中的炎症反应和氧化应激 | 第49-50页 |
| 3.3 Xc~-与机械通气肺损伤 | 第50-53页 |
| 4 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 综述 | 第62-73页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
