| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-13页 |
| 缩略词 | 第20-21页 |
| 第一章 绪论 | 第21-59页 |
| 1.1 室内空气甲醛污染的来源、现状和危害 | 第21-23页 |
| 1.2 室内空气HCHO污染的净化方法 | 第23-29页 |
| 1.2.1 净化方法分类概述 | 第23-27页 |
| 1.2.2 植物净化HCHO的研究进展 | 第27-29页 |
| 1.3 高等植物净化HCHO污染的机制 | 第29-42页 |
| 1.3.1 HCHO在植物体内的代谢机制 | 第29-36页 |
| 1.3.2 植物对HCHO胁迫的响应机制 | 第36-42页 |
| 1.4 植物气孔活动的调控机制 | 第42-57页 |
| 1.4.1 调控气孔运动的生理机制 | 第42-47页 |
| 1.4.2 植物气孔活动的信号转导途径 | 第47-54页 |
| 1.4.3 逆境胁迫信号分子对气孔运动的调控机制 | 第54-56页 |
| 1.4.4 HCHO胁迫影响气孔运动的机制研究进展 | 第56-57页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第57-59页 |
| 第二章 HCHO胁迫对蚕豆气孔特性和叶片PM H~+ -ATPase与14-3-3蛋白互作及基因表达的影响 | 第59-85页 |
| 2.1 材料与方法 | 第59-67页 |
| 2.1.1 植物材料培养 | 第59-60页 |
| 2.1.2 HCHO处理 | 第60-61页 |
| 2.1.3 HCHO吸收效率、吸收百分比和叶片中游离HCHO含量测定 | 第61-62页 |
| 2.1.4 气孔开度和导度测定 | 第62页 |
| 2.1.5 叶片H_2O_2含量测定 | 第62-63页 |
| 2.1.6 叶片质膜蛋白的提取和PM H~+-ATPase纯化 | 第63页 |
| 2.1.7 叶片PM H~+-ATPase活性和泵H~+能力测定 | 第63-64页 |
| 2.1.8 蚕豆叶片下表皮总RNA提取和RT-PCR分析 | 第64-65页 |
| 2.1.9 VHA2磷酸化抗体制备 | 第65-66页 |
| 2.1.10 Western blot和Co-IP分析 | 第66-67页 |
| 2.1.11 数据统计分析 | 第67页 |
| 2.2 结果与分析 | 第67-79页 |
| 2.2.1 高浓度HCHO胁迫对蚕豆叶片气孔生理与分子特性的影响 | 第67-73页 |
| 2.2.2 环境低浓度HCHO处理对蚕豆叶片气孔的生理与分子特性的影响 | 第73-79页 |
| 2.3 讨论 | 第79-83页 |
| 2.3.1 高浓度HCHO处理下蚕豆气孔特性生理特性与叶片PM H~+-ATPase活性、PM H~+-ATPase与14-3-3蛋白互作及表达的相关性 | 第79-81页 |
| 2.3.2 环境低浓度HCHO处理下蚕豆气孔特性生理特性与叶片PM H~+-ATPase活性、PM H~+-ATPase与14-3-3蛋白互作及表达的相关性 | 第81-82页 |
| 2.3.3 叶片PM H~+-ATP酶与14-3-3蛋白调控蚕豆吸收气体HCHO的可能机制 | 第82-83页 |
| 2.4 结论 | 第83-85页 |
| 第三章 PM H~+-ATPase和14-3-3蛋白的互作调控蚕豆HCHO吸收机理的验证 | 第85-105页 |
| 3.1 材料与方法 | 第85-88页 |
| 3.1.1 材料培养与处理 | 第85-87页 |
| 3.1.2 HCHO吸收效率和吸收百分比测定 | 第87页 |
| 3.1.3 气孔开度和导度测定 | 第87页 |
| 3.1.4 叶片质膜蛋白的提取和PM H~+-ATPase纯化 | 第87-88页 |
| 3.1.5 叶片PM H~+-ATPase活性和泵H~+能力测定 | 第88页 |
| 3.1.6 Western blot和Co-IP分析 | 第88页 |
| 3.1.7 数据统计分析 | 第88页 |
| 3.2 结果与分析 | 第88-100页 |
| 3.2.1 PM H~+-ATPase激活剂和抑制剂对蚕豆气孔生理生化特性应答高浓度HCHO胁迫的影响 | 第88-96页 |
| 3.2.2 PM H~+-ATPase激活剂和抑制剂对气孔生理生化特性应答环境低浓度HCHO胁迫的影响 | 第96-100页 |
| 3.3 讨论 | 第100-103页 |
| 3.3.1 PM H~+-ATPase抑制剂减少蚕豆吸收HCHO的生理生化机制 | 第100-101页 |
| 3.3.2 PM H~+-ATPase激活剂增强蚕豆吸收HCHO的生理生化机制 | 第101-103页 |
| 3.4 结论 | 第103-105页 |
| 第四章 HCHO胁迫对蚕豆保卫细胞H_2O_2亚细胞定位和抗氧化酶活性的影响 | 第105-115页 |
| 4.1 材料与方法 | 第105-106页 |
| 4.1.1 植物材料培养 | 第105-106页 |
| 4.1.2 HCHO处理 | 第106页 |
| 4.1.3 保卫细胞中H_2O_2的荧光原位观察 | 第106页 |
| 4.1.4 抗氧化酶活性测定 | 第106页 |
| 4.1.5 数据统计分析 | 第106页 |
| 4.2 结果与分析 | 第106-111页 |
| 4.2.1 高浓度HCHO处理下蚕豆叶片H_2O_2分布和抗氧化功能的变化 | 第106-109页 |
| 4.2.2 环境低浓度HCHO处理下蚕豆叶片H_2O_2分布和抗氧化功能的变化 | 第109-111页 |
| 4.3 讨论 | 第111-113页 |
| 4.3.1 高浓度HCHO处理影响蚕豆叶片H_2O_2亚细胞定位的生化机制 | 第111-112页 |
| 4.3.2 环境低浓度HCHO处理影响蚕豆叶片H_2O_2积累与亚细胞定位的生化机制 | 第112-113页 |
| 4.4 结论 | 第113-115页 |
| 第五章 外源H_2O_2和H_2O_2清除剂的应用对蚕豆气孔生理生化特性应答HCHO胁迫的影响 | 第115-135页 |
| 5.1 材料与方法 | 第115-118页 |
| 5.1.1 材料培养与处理 | 第115-117页 |
| 5.1.2 HCHO吸收效率和叶片中游离HCHO含量测定 | 第117页 |
| 5.1.3 气孔开度和导度测定 | 第117页 |
| 5.1.4 H_2O_2含量测定 | 第117页 |
| 5.1.5 保卫细胞中H_2O_2的荧光原位观察 | 第117页 |
| 5.1.6 叶片质膜蛋白的提取和PM H~+-ATPase纯化 | 第117页 |
| 5.1.7 叶片PM H~+-ATPase活性和泵H~+能力测定 | 第117页 |
| 5.1.8 蚕豆叶片下表皮总RNA提取和RT-PCR分析 | 第117页 |
| 5.1.9 Western blot和Co-IP分析 | 第117-118页 |
| 5.1.10 数据统计分析 | 第118页 |
| 5.2 结果与分析 | 第118-129页 |
| 5.2.1 外源H_2O_2、ASA对蚕豆气孔生理生化特性应答高浓度HCHO胁迫的影响 | 第118-125页 |
| 5.2.2 外源H_2O_2和ASA对蚕豆气孔生理生化特性应答环境低浓度HCHO胁迫的影响 | 第125-129页 |
| 5.3 讨论 | 第129-132页 |
| 5.3.1 HCHO胁迫下蚕豆保卫细胞H_2O_2积累影响HCHO吸收的生理机制 | 第129-130页 |
| 5.3.2 外源H_2O_2抑制蚕豆吸收HCHO的生理生化机制 | 第130-131页 |
| 5.3.3 ASA增强蚕豆吸收HCHO的生理生化机制 | 第131-132页 |
| 5.4 结论 | 第132-135页 |
| 第六章 响应面优化法建立PM H~+-ATPase与14-3-3蛋白互作的激活剂提高蚕豆净化空气甲醛污染能力的数学模型 | 第135-151页 |
| 6.1 材料与方法 | 第135-139页 |
| 6.1.1 材料培养 | 第135-136页 |
| 6.1.2 单因素实验 | 第136页 |
| 6.1.3 爬坡实验设计 | 第136-137页 |
| 6.1.4 中心组合方案设计(BBD) | 第137-138页 |
| 6.1.5 响应面分析方案及运行 | 第138-139页 |
| 6.1.6 响应面分析 | 第139页 |
| 6.1.7 验证实验 | 第139页 |
| 6.2 结果与分析 | 第139-148页 |
| 6.2.1 Mg~(2+)预处理的BBD组合设计和响应面分析 | 第139-143页 |
| 6.2.2 IAA预处理的BBD组合设计和响应面分析 | 第143-148页 |
| 6.3 讨论 | 第148-149页 |
| 6.4 结论 | 第149-151页 |
| 第七章 总结和展望 | 第151-155页 |
| 致谢 | 第155-157页 |
| 参考文献 | 第157-183页 |
| 攻读博士研究生期间发表的论文 | 第183页 |
